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文檔簡介
1、將種子細胞與多孔支架(人工合成或天然)混合后培養(yǎng)是組織工程體外實驗的主要模式,再配合特定培養(yǎng)條件使種子細胞向特定方向分化、增殖,可以滿足定向組織構建的需求。脂肪干細胞具有取材難度低、增殖活性高、分化方向多、表型表達穩(wěn)定等特性,是目前組織工程研究比較理想的種子細胞。
現(xiàn)階段,越來越多的學者認識到支架內(nèi)部空間立體因素對種子細胞增殖、分化存在影響。但由于常用的支架材料大多不透明,如要觀察所種植細胞的行為大多需要通過破壞細胞所處微環(huán)境
2、方能實現(xiàn)。如果能夠在保持細胞及周圍微環(huán)境相對穩(wěn)定的情況下進行無干擾的觀察、檢測,將對解釋空間立體因素作用于細胞的機制提供巨大的幫助。
隨著微尺度技術(Micro-scale technologies)的發(fā)展,研究者可以設計、制作微米級甚至納米級細胞培養(yǎng)平臺。其中,微孔陣列(Microwells)實驗平臺因其具有加工難度低、生物親和度高、通用性強、設備需求度低等優(yōu)點,在組織工程領域已獲得越來越多的關注。利用這一平臺可以實現(xiàn)對所種
3、植細胞幾乎無干擾的觀察,為高效率研究物理、空間因素對細胞增殖、分化的影響提供了契機。
目的:利用高精度微尺度技術制作出不同孔徑的微米級聚二甲基硅氧烷(PDMS)微孔陣列,再將人脂肪干細胞以一定濃度接種于其中,使細胞在不同直徑微孔內(nèi)呈現(xiàn)多種層疊狀態(tài)(單層、多層)。通過對不同層疊狀態(tài)下細胞的增殖、凋亡、分化等行為進行檢測,一方面驗證此實驗平臺的安全性,另一方面在保持細胞外微環(huán)境不被破壞的前提下對細胞的生物學行為進行觀察、分析,著重
4、探討空間立體因素對人脂肪干細胞體外培養(yǎng)中增殖及分化行為的影響。
方法:(1)通用型PDMS微孔陣列微反應器的構建:借助高精度微尺度技術在硅晶元表面制作高度為50μm及直徑分別為60μm、80μm、100μm和150μm的微柱狀結構,經(jīng)聚二甲基硅氧烷(PDMS)倒模生成同規(guī)格孔徑的微孔陣列,加裝PDMS環(huán)形外壁后組成微反應器。測量、分析此實驗平臺所生成微孔的誤差率,并測試微反應器的密封性。(2)人脂肪干細胞體外培養(yǎng)的增殖、分化特
5、性及鑒定:對成品人脂肪干細胞進行體外培養(yǎng)鑒定,檢測第1、3、6代細胞活性,觀察其形態(tài)變化、生長趨勢和活細胞比例,并繪制細胞生長曲線、計算群體倍增時間;檢測此三代細胞的表面抗原標記是否存在差異;選取第3代細胞進行成脂、成骨誘導分化,并通過油紅O、茜素紅染色及成脂分化(PPAR-γ、β-Actin和C/EBPα)、成骨分化(OPN、OCN和AKP)特異性標記物進行鑒定,判斷其成脂、成骨分化能力。(3)利用通用型PDMS微孔陣列微反應器研究空
6、間堆疊因素對人脂肪干細胞增殖、凋亡的影響:取第3代人脂肪干細胞配制成3×104/ml、6×104/ml、1×105/ml三種濃度單細胞懸液,分別接種于無微孔PDMS平面微反應器、普通培養(yǎng)皿密閉培養(yǎng)區(qū)及具備直徑60μm、80μm、100μm和150μm微孔的微孔陣列微反應器內(nèi),選擇種植后24h、72h、120h和168h為采樣點,用光學顯微鏡、掃描電鏡觀察細胞分布狀況并進行形態(tài)學描述,再用激光掃描共聚焦顯微鏡對經(jīng)熒光染色細胞進行細胞分布、
7、細胞計數(shù)及凋亡計數(shù)檢測,確定能夠最終實現(xiàn)可控堆疊模型(單層組、1-2層組、2-3層組)的脂肪干細胞懸液濃度-微孔孔徑配比。(4)利用通用型PDMS微孔陣列微反應器研究空間堆疊因素對人脂肪干細胞成脂、成骨分化傾向的影響:在前一實驗基礎上選擇具備80μm、100μm和150μm直徑微孔的PDMS微孔陣列微反應器,配制濃度為6×104/ml的脂肪干細胞單細胞懸液接種于微反應器內(nèi),形成三組具備不同堆疊層數(shù)(單層組、1-2層堆疊組、2-3層堆疊組
8、)的三維培養(yǎng)實驗組,接種后24h開始成脂和成骨誘導,于誘導后14d對微反應器內(nèi)的細胞進行油紅O和茜素紅染色,并于誘導后0d、7d、14d將微反應器內(nèi)的細胞消化后收集,分別對其成脂分化(PPAR-γ、β-Actin和C/EBPα)、成骨分化(OPN、OCN和AKP)特異性標記物進行定量分析,比較各時間點不同堆疊狀態(tài)對脂肪干細胞分化傾向性的影響。
結果:(1)實驗一:成功構建高精度通用型PDMS微孔陣列微反應器,各孔徑誤差率<±0
9、.2%,微反應器外壁與底面黏著良好無滲漏。(2)實驗二:人脂肪干細胞體外培養(yǎng)具有穩(wěn)定且旺盛的生長能力,增殖能力強且穩(wěn)定,第1、3、6代細胞活細胞比例并無顯著性差異(p=0.108),此三代細胞間群體倍增時間無顯著性差異(p=0.104);細胞表面標記物符合間充質干細胞特征,CD10、CD13、CD29、CD44、CD59、CD71和CD105呈現(xiàn)高表達,CD11b、CD14、CD18、CD34、CD45、CD56和HLA-DR呈現(xiàn)低表達
10、或無表達,且經(jīng)多次傳代后仍保持比例穩(wěn)定;經(jīng)體外成脂、成骨誘導后,細胞經(jīng)特異性染色鑒定(油紅O、茜素紅)及特異性標記物表達檢測(成脂:PPAR-γ、β-Actin、C/EBPα,成骨:OPN、OCN和AKP),證實其具有分化為脂肪細胞及成骨細胞的能力,且隨培養(yǎng)時間延長表達量顯著增高(p<0.01)。(3)實驗三:細胞在PDMS平面與普通培養(yǎng)皿表面培養(yǎng)并無明顯差異;利用PDMS微孔陣列可以構建滿足實驗設計需要的細胞堆疊模型,人脂肪干細胞以6
11、×104/ml濃度接種時,可以實現(xiàn)在150μm直徑微孔內(nèi)呈單層平鋪、100μm直徑微孔內(nèi)呈2層堆疊、80μm直徑微孔內(nèi)呈3層堆疊,微孔內(nèi)細胞數(shù)在7d內(nèi)穩(wěn)定無顯著增減;60μm直徑微孔內(nèi)細胞量最少(p<0.05),且微孔內(nèi)細胞凋亡比例高于其他各組(p<0.05);堆疊層數(shù)越高,細胞凋亡比例越高。(4)實驗四:處于不同堆疊狀態(tài)的人脂肪干細胞其分化傾向存在差異,成脂分化傾向以單層組最高、2層堆疊次之、3層堆疊組最低(p<0.05);成骨分化傾
12、向以2層堆疊最高、3層堆疊次之、單層組最低(p<0.05);微反應器內(nèi)特異性分化標記物水平升高晚于純平面培養(yǎng)。
結論:本研究成功設計并制作出通用型PDMS微孔陣列微反應器,其底板為大量排列整齊、誤差率極小的微米級微孔陣列,配合PDMS彈性外壁形成以微孔陣列區(qū)為中心的微反應環(huán)境。
成品人脂肪干細胞具有基本一致的細胞表面標記及免疫特征,不僅具有旺盛、持久的增殖活性,還能保證其細胞表面標記經(jīng)過多代增殖后不發(fā)生顯著改變,更能
13、實現(xiàn)體外人工誘導下的成脂、成骨分化,滿足實驗需求。
將此細胞群種植于PDMS微反應器微孔陣列區(qū)內(nèi),借助微米級平臺的結構穩(wěn)定性,結合對接種密度與微孔設計的調(diào)整,構建了可控的細胞立體空間堆疊模型;同時,由于PDMS材質的高透光性,能夠實現(xiàn)對微孔內(nèi)細胞分布、增殖的無創(chuàng)性觀察;對微孔內(nèi)細胞經(jīng)過成脂、成骨誘導并進行相關分化標記物檢測,明確在不同堆疊狀態(tài)下標記物表達水平。通過本實驗,不僅收集了細胞堆疊平臺所需的基本數(shù)據(jù)(細胞接種濃度、微孔
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