水產(chǎn)養(yǎng)殖學(xué)畢業(yè)論文-tzds對(duì)日本黃姑魚糖代謝影響的研究

1、<p><b>　　本科畢業(yè)論文</b></p><p><b>　?。?0 屆）</b></p><p>　　TZDs對(duì)日本黃姑魚糖代謝影響的研究</p><p>　　所在學(xué)院 </p><p>　　專業(yè)班級(jí) 水產(chǎn)

2、養(yǎng)殖學(xué) </p><p>　　學(xué)生姓名 學(xué)號(hào) </p><p>　　指導(dǎo)教師 職稱 </p><p>　　完成日期 年 月 </p><p><b>　　目錄</b>&

3、lt;/p><p>　　中文摘要………………………………… ………………………………………… 1</p><p>　　英文摘要 …………………………………………………………………………… 2</p><p>　　1. 前言……………………………………………………………………………… 3</p><p>　　2. 材料與方法………………………………

4、……………………………………… 3</p><p>　　2.1 試驗(yàn)飼料…………………………………………………………………… 3</p><p>　　2.2 試驗(yàn)魚和飼養(yǎng)管理………………………………………………………… 4</p><p>　　2.3 樣品采集和分析…………………………………………………………… 5</p><p>　　2.4

5、 成分分析…………………………………………………………………… 5</p><p>　　3. 結(jié)果 ………………………………………………………………………………7</p><p>　　3.1 對(duì)日本黃姑魚生長(zhǎng)的影響………………………………………………… 7 </p><p>　　3.2 對(duì)日本黃姑魚內(nèi)臟比、肝比、腸脂比、豐滿度的影響……………………7</p&g

6、t;<p>　　3.3 對(duì)日本黃姑魚全魚、肌肉和肝臟營(yíng)養(yǎng)組成的影響 ………………………7</p><p>　　討論 …………………………………………………………………………………8</p><p>　　致謝…………………………………………………………………………………9</p><p>　　參考文獻(xiàn)……………………………………………………………………

7、……… 11</p><p>　　TZDs對(duì)日本黃姑魚糖代謝影響的研究</p><p>　　[摘要] 本研究通過一個(gè)短期的生長(zhǎng)試驗(yàn)，研究了在飼料中糖水平對(duì)日本黃姑魚生長(zhǎng)的影響。在本實(shí)驗(yàn)中，飼料以玉米淀粉為主要糖源，設(shè)置了三個(gè)實(shí)驗(yàn)組，分別為低糖組（12%）、高糖組（30%）和添加TZDs（0.03%）的高糖組。通過八周的飼養(yǎng)，來確定糖水平對(duì)日本黃姑魚生長(zhǎng)的影響。實(shí)驗(yàn)均在室內(nèi)進(jìn)行。飼養(yǎng)實(shí)驗(yàn)結(jié)束

8、后，饑餓24h后以箱為單位計(jì)黃姑魚數(shù)量并稱總重，計(jì)算成活率、增重率（WG）、特定生長(zhǎng)率（SGR）、蛋白質(zhì)效率（PER）和 飼料系數(shù)（FCR）。實(shí)驗(yàn)表明隨著糖水平的增加，日本黃姑魚的生長(zhǎng)并沒有顯著變化，日本黃姑魚可能對(duì)較高水平的糖具有一定的耐受性。觀察添加TZDs的高糖組發(fā)現(xiàn)，日本黃姑魚肝比、腸脂比和肝臟脂肪均有下降，而肌肉脂肪顯著增加，這說明了添加了TZD后日本黃姑魚胰島素的敏感性增強(qiáng)。</p><p>　　[關(guān)

9、鍵詞] 日本黃姑魚 糖水平 生長(zhǎng) </p><p>　　TZDs impact sugar metabolism in Juvenile giant croaker</p><p>　　[Abstract] The research through a short-term growth tests,and the sugar level in feed to Juvenile

10、giant croaker long influence .In this lab,feed using corn starch as the main sugar, set up three group source, respectively(12%),low-carbohydrate group high sugar group (30%) and add TZDs (0.03%) high sugar groups. Throu

11、gh eight weeks of breeding, to determine Juvenile giant croaker glucose leels influence long. Experiments are done indoors. After breeding laboratory 24h with box, hunger for unit pl</p><p>　　[Keywords] Juve

12、nile giant croaker Sugar level Growth</p><p>　　對(duì)日本黃姑魚糖代謝影響的研究</p><p><b>　　1. 前言</b></p><p>　　糖類是在自然界中分布極為廣泛的一類化合物，是生命活動(dòng)所需主要能量來源。糖是魚類的腦、鰓組織和紅細(xì)胞等必需的代謝供能底物之一，與魚體維持正常的

13、生理功能和存活能力密切相關(guān)。適宜的糖含量可減少魚類對(duì)蛋白質(zhì)的消耗量，但是糖水平過高則會(huì)抑制魚體生長(zhǎng)，導(dǎo)致血糖水平持續(xù)偏高[1-2]，免疫功能降低[3-4]。</p><p>　　與陸生動(dòng)物相比，魚表現(xiàn)出對(duì)飼料中的糖類利用很差的現(xiàn)象，特別是對(duì)于肉食性的海水魚類更為明顯[5-7]，它們難以利用糖作為能量的來源。Cowey和Adron（1997a）研究報(bào)告指出：當(dāng)與高蛋白低糖飼料相比，高糖低蛋白飼料沒有引起肉食性魚類體

14、內(nèi)葡萄糖激酶和己糖激酶（調(diào)節(jié)血糖的關(guān)鍵酶）含量的增加[8-9]，而且即使在攝食較低蛋白飼料時(shí)，肉食性魚類還是繼續(xù)使用氨基酸用作能為能源，提供機(jī)體能量[10-12]。</p><p>　　魚類對(duì)糖的利用很差最初被認(rèn)為可能是由于內(nèi)源胰島素水平過低造成的[13]。然而，隨著放射免疫實(shí)驗(yàn)方法技術(shù)的發(fā)展，已經(jīng)表明魚體具有高胰島素水平[14-15]。所有研究的魚類中都有高胰島素血癥的發(fā)生，最高的胰島素水平出現(xiàn)在餐后1-3小時(shí)

15、[16-18]，24小時(shí)后才逐漸降低到基礎(chǔ)水平。但是研究發(fā)現(xiàn)，魚體胰島素與受體(receptor)的結(jié)合能力大約只有老鼠的1/4[18]，因而魚類對(duì)糖類利用性不佳的原因可能是因?yàn)橐葝u素抵抗所造成的。</p><p>　　魚類對(duì)糖的利用機(jī)制，特別是對(duì)肉食性的海水魚類的有關(guān)機(jī)制的探討一直是國(guó)內(nèi)外相關(guān)學(xué)者研究的熱點(diǎn)。Kirchner（2003）等通過研究虹鱒(Oncorhynchus mykiss)體內(nèi)糖代謝酶及其分子

16、表達(dá)機(jī)制，闡釋了魚類對(duì)糖的生化代謝[19]。田麗霞(2003)對(duì)草魚（Ctenopharyngodon idellus）[20]，Baeverfjond(2005)等對(duì)大西洋比目魚(Hippoglossus hippoglossus)[21]在高糖飼料引起生長(zhǎng)抑制等方面均進(jìn)行了研究。</p><p>　　日本黃姑魚（Nibea japonica），俗稱黑毛鲿，屬鱸形目，石首魚科，黃姑魚屬，為一大型食用魚類，分布于

17、中國(guó)東海及日本南部海域[22]。因其生長(zhǎng)快，抗病力強(qiáng)，肉質(zhì)鮮美、細(xì)嫩等特點(diǎn)，得到生產(chǎn)者和消費(fèi)者的普遍歡迎[23]。目前，日本黃姑魚已在浙江沿海深水網(wǎng)箱示范點(diǎn)進(jìn)行養(yǎng)殖試驗(yàn)，取得一定成就。但是有關(guān)于日本黃姑魚對(duì)高糖利用方面的研究還未見報(bào)道。本文通過研究不同糖水平對(duì)日本黃姑魚生長(zhǎng)及其體組成的影響,探討日本黃姑魚糖代謝特點(diǎn)，以期為海水肉食性魚類糖代謝機(jī)理的研究提供佐證。</p><p><b>　　2. 材料與

18、方法</b></p><p><b>　　2.1 試驗(yàn)飼料</b></p><p>　　飼料配方如表1所示，設(shè)置三個(gè)實(shí)驗(yàn)組，分別為低糖組（12%）、高糖組（30%）和添加TZDs（0.03%）的高糖組。將各種干飼料原料粉碎，按表1配方中的比例準(zhǔn)確稱重后初混和用攪拌機(jī)攪勻15min，之后加入魚油、豆油、大豆磷脂又?jǐn)嚢?5min，用KL-系列顆粒飼料機(jī)制粒成直

19、徑1.2毫米的實(shí)驗(yàn)飼料，在室溫條件自然風(fēng)干至水分含量少于10％，而后用封口塑料袋分裝，－20℃保存?zhèn)溆谩?lt;/p><p><b>　　表1試驗(yàn)飼料配方</b></p><p>　　Tab.1 Composition of experimental diets</p><p>　　2.2 試驗(yàn)魚和飼養(yǎng)管理</p><p>

20、　　實(shí)驗(yàn)在浙江海洋學(xué)院試驗(yàn)場(chǎng)進(jìn)行。實(shí)驗(yàn)采用的日本黃姑魚幼魚取自浙江海洋水產(chǎn)研究所西閃試驗(yàn)場(chǎng)自行人工繁育的魚苗。實(shí)驗(yàn)開始前先將若干健康的大小相近的幼魚放在選定的水泥池中暫養(yǎng)。待生長(zhǎng)與攝食穩(wěn)定后，隨機(jī)挑選幼魚分別放入9個(gè)圓柱形養(yǎng)殖試驗(yàn)桶中，按隨機(jī)分組法分成3組，每組3個(gè)平行。每桶40條幼魚，要求規(guī)格整齊。實(shí)驗(yàn)期間采用流水式培養(yǎng)，連續(xù)充氣，循環(huán)凈化系統(tǒng)的水經(jīng)沉淀、沙濾池過濾，以除去固體廢物。實(shí)驗(yàn)期間采用自然光照，養(yǎng)殖用水的生化條件分別為：水溫

21、27.50±0.45℃、溶解氧大于7mg/L、總氨氮在適宜范圍內(nèi)、pH7.8±0.2。實(shí)驗(yàn)期為8周，每次投餌量以飽食為準(zhǔn)，每天分2次投喂（上午8：30和下午17：30），每天傍晚將殘餌和糞便吸出。</p><p>　　2.3 樣品采集和分析</p><p>　　飼養(yǎng)實(shí)驗(yàn)結(jié)束后，饑餓24h后以桶為單位取出全桶日本黃姑魚稱總重，并計(jì)算增重率（Percent weight g

22、ain，WG）、存活率（Survival rate，SR）、特定生長(zhǎng)率（Specific growth rate，SGR）、飼料系數(shù)（Feed conversion ratio，F(xiàn)CR）和蛋白質(zhì)效率（Protein efficiency ration，PER）。然后取出8尾魚，用MS222把魚麻醉后解剖取出內(nèi)臟、分離肝臟、腸系膜脂肪，并分別稱量?jī)?nèi)臟重、肝重、腸系膜脂肪重以計(jì)算臟體比（viscera index，VSI）、肝體比（Hepa

23、tosomatic index，HSI）和腸脂比（Intraperitoneal fat，IPF）；剪取背部?jī)蓚?cè)白肌，稱重。所有樣品迅速用液氮急凍，存于-70℃?zhèn)錅y(cè)。</p><p><b>　　2.4 成分分析</b></p><p>　　采用105℃常壓干燥法，凱氏定氮法，索氏抽提法，550℃灼燒法及氧彈式熱量計(jì)分別測(cè)定全魚及飼料的水分、粗蛋白、粗脂肪、灰分和能量

24、。</p><p>　　2.4.1 粗蛋白質(zhì)測(cè)定</p><p>　　依照Micro－Kjeldahl(AOAC)方法進(jìn)行，稱取樣品約0.2g，然后加入3克K2SO4、0.5克CuSO4及10ml的濃硫酸于消化管中，將消化管置于已預(yù)熱消化儀器（BUCHI Distillation Unit K-355）中，蓋上抽氣頭，打開水流抽氣并加熱(約420℃)消化溶液至澄清碧綠后，停止加熱并取出消化

25、管冷卻至室溫，然后將每支試管依次裝入蒸餾儀器（Digest Automat K-438）中，按照預(yù)先設(shè)定的程序先加入適量蒸餾水進(jìn)行稀釋，然后加入適量40%NaOH，最后以含有溴甲酚綠和甲基紅指示劑的4%硼酸80 ml收集5分鐘，用0.1mol\L的 HCl滴定至溶液呈微紅時(shí)達(dá)滴定終點(diǎn)。</p><p><b>　　計(jì)算公式：</b></p><p>　　蛋白質(zhì)含量(﹪

26、)= 　　　　　　　　　　　　　?。ǎ保?錯(cuò)誤!未指定書簽。</p><p>　　錯(cuò)誤!未指定書簽。a：空白組的滴定毫升數(shù)。</p><p>　　b：樣品的滴定毫升數(shù)。</p><p>　　S：樣品的重量 (克)。</p><p>　　N：HCI的摩爾濃度。</p><p>　　2.4.2 粗脂肪測(cè)定：<

27、;/p><p>　　稱取樣品0.2可左右，用濾紙包好(不可扎得太緊，以樣品不散漏為宜，使用去脂肪的濾紙包2層)，然后將包好的濾紙包放到干燥的浸提管內(nèi)，濾紙高度不能高過虹吸管頂部。浸提管上部連接冷凝管，并用一小團(tuán)脫脂棉輕輕塞住冷凝管的上部管口。浸提管的下部連接抽提瓶，抽提瓶中加入約瓶體1/2的石油醚，并置于水浴鍋中。打開冷凝水，開始加熱抽提。加熱的水浴鍋的溫度控制在70℃左右，抽提時(shí)間約3小時(shí)，以浸提管內(nèi)的石油醚沾在濾

28、紙包上不顯油脂為止。抽提完畢，移去上部的冷凝管，取出濾紙包。重新連接好冷凝器，在水浴鍋中回收石油醚。濾紙包置于烘箱內(nèi)100-105℃烘干至恒重，準(zhǔn)確稱重。濾紙包前后的重量差即為樣品中的粗脂肪重量。</p><p><b>　　計(jì)算公式：</b></p><p>　　水分(%)=×100　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　（２）</p&

29、gt;<p>　　W0：抽濾前紙包的重量 (克)。</p><p>　　W1：抽濾后紙包的重量 (克)。</p><p>　　S：樣品的重量 (克)。</p><p>　　2.4.3水份測(cè)定：</p><p>　　依照AOAC(1984)分析方法，稱取飼料或魚肉，置于已達(dá)恒重且以稱重之坩堝，于110℃烘箱中干燥至少24小時(shí)，直到

30、恒重為止。取出坩堝置于干燥器，待其溫度將指室溫，稱重并記錄至0.1mg。</p><p><b>　　計(jì)算公式：</b></p><p>　　水分(%)=×100</p><p>　?。?：坩堝的恒重量 (克)。</p><p>　?。?：坩堝重+樣品重量 (克)。</p><p>　　

31、Ｗ2：干燥至恒重的重量 (克)。</p><p>　　2.4.4灰份測(cè)定：</p><p>　　依照AOAC (1984)分析方法，稱取飼料或魚肉，置于已達(dá)恒重且以稱重之坩堝中，置于550℃的馬福爐中，灰化12 小時(shí)，取出放入干燥器內(nèi)冷卻至室溫后，稱重并記錄至0.1 mg。</p><p><b>　　計(jì)算公式：</b></p>

32、<p>　　灰分(%)=×100　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　（３）</p><p>　?。?：坩堝的恒重量 (克)。</p><p>　?。?：坩堝重+灰化后的樣品重量 (克)。</p><p>　　S：灰化前的樣品重量 (克)。</p><p><b>　　2.4.5結(jié)果計(jì)算</

33、b></p><p>　　試驗(yàn)魚的增重率、特定生長(zhǎng)率、飼料系數(shù)、蛋白質(zhì)效率氮保留率、脂肪保留率等的計(jì)算公式如下：</p><p>　　增重率（Percent weight gain，WG）</p><p>　　增重率= ×100　　　　　　　　　　　（４）</p><p>　　特定生長(zhǎng)率（Specific growth rat

34、e，SGR）</p><p>　　特定生長(zhǎng)率=×100　　　　　?。ǎ担?lt;/p><p>　　飼料系數(shù)（Feed conversion ratio，F(xiàn)CR）</p><p>　　飼料系數(shù)＝　　　　　　　　　　　?。ǎ叮?lt;/p><p>　　蛋白質(zhì)效率（Protein efficiency ration，PER）</p>

35、<p>　　蛋白質(zhì)效率（＝　　　　　　　　　　（７）</p><p><b>　　肥滿度＝×100</b></p><p>　　肝體比（Hepatosomatic index，HSI）</p><p>　　肝體比＝×100　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　（８）</p><p&

36、gt;　　臟體比（viscera index，VSI）</p><p>　　臟體比＝×100　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　（９）</p><p>　　腸脂比（Intraperitoneal fat，IPF）</p><p>　　腸脂比=×100%　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　?。ǎ保埃?lt;/p><

37、;p>　　2.4.6試驗(yàn)結(jié)果的統(tǒng)計(jì)分析</p><p>　　所有數(shù)據(jù)均采用平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤表示，經(jīng)單因子方差分析（ANOVA），之后采用Duncan氏 (1955)多重比較檢驗(yàn)均值的差異顯著性，顯著性水平為0.05。所有統(tǒng)計(jì)分析和作圖采用SPSS 10.0 for Windows。</p><p><b>　　3. 結(jié)果分析</b></p>

38、<p>　　3.1 飼料糖水平對(duì)日本黃姑魚生長(zhǎng)的影響</p><p>　　經(jīng)過八周不同糖水平飼料喂養(yǎng)日本黃姑魚后，實(shí)驗(yàn)得出表2所示的處理結(jié)果。</p><p>　　日本黃姑魚攝食組2飼料后增重率最高，為1071.93±96.04%；其次為組1飼料，增重為994.27±106.07%；組3飼料相對(duì)最低，為908.79±128.80%,但3組間無顯著性

39、差異。特定生長(zhǎng)率（SGR）、飼料效率（FCR）和蛋白質(zhì)效率(PER)亦為組2>組1>組3,但從統(tǒng)計(jì)學(xué)分析來看,3組間仍無顯著性差異。</p><p>　　表2實(shí)驗(yàn)處理：對(duì)日本黃姑魚生長(zhǎng)的影響</p><p>　　Tab. 2 Experimental treatment：Effects of growth on Japanese croaker</p><p

40、>　　3.2糖水平對(duì)黃姑魚內(nèi)臟比、肝比、腸脂比、豐滿度的影響</p><p>　　表3顯示的是3個(gè)實(shí)驗(yàn)組的形態(tài)指標(biāo)數(shù)值。</p><p>　　內(nèi)臟比以組1最高,且顯著高于組2和組3(P<0.05)。肝比以組1最高，且顯著高于組3(P<0.05)，而2組肝比與1組和3組相比均無顯著差異。</p><p>　　在腸脂比中，組2腸脂比最高，且顯著高于組3

41、，而組1與其他兩組均無顯著差別。在用不同糖水平飼喂黃姑魚后，豐滿度以組2最高，但三組間無顯著性差異。</p><p>　　表3實(shí)驗(yàn)處理：對(duì)日本黃姑魚內(nèi)臟比、肝比、腸脂比、豐滿度的影響</p><p>　　Tab.3 Experimental treatment：Effects of VSI、HSI、IPF and CF on Japanese croaker</p><

42、p>　　3.3 糖水平對(duì)黃姑魚全魚、肌肉和肝臟營(yíng)養(yǎng)組成的影響</p><p>　　用不同糖水平飼料飼養(yǎng)黃姑魚60d后全魚、肌肉和肝臟的營(yíng)養(yǎng)組成見表4。</p><p>　　組3日本黃姑魚全魚的蛋白質(zhì)、脂肪和灰份含量無顯著性差異。而全魚水分含量以組3最高，且顯著高于組2(P<0.05)，而組1與組2和組3無顯著差異。</p><p>　　肌肉水分和蛋白質(zhì)含

43、量在3組間無顯著性差異,而脂肪含量組3最高，組2與組1和組3無顯著差異，而組1則顯著低于組3(P<0.05)。</p><p>　　在肝臟中，水分和蛋白質(zhì)含量亦無顯著差異。比較脂肪含量可發(fā)現(xiàn)，組1脂肪含量最高，而組3脂肪含量最低，且顯著低于組1。組2則與其他兩組無顯著差異。</p><p>　　表4實(shí)驗(yàn)處理：對(duì)日本黃姑魚全魚、肌肉和肝臟營(yíng)養(yǎng)組成的影響</p><p

44、>　　Tab.4 Experimental treatment：Proximate composition of whole fish、musle and liver on</p><p>　　Japanese croaker</p><p><b>　　3．討論</b></p><p>　　普遍認(rèn)為魚類利用糖的能力較低,特別是肉食性的海

45、水魚類更為明顯[7]。Furuichi和Yone[24]曾用分別含0%、10%、20%、30%和40%糊精的飼料喂養(yǎng)鯉、真鯛以及鰤，30天后飼料糊精水平分別為30%和20%組真鯛和鰤的生長(zhǎng)受抑制，而鯉的生長(zhǎng)在40%時(shí)才受到影響。由此得出，對(duì)糊精的利用能力鰤是最差的，其次是真鯛，而鯉魚的利用能力最強(qiáng)。一般認(rèn)為,海水性魚類飼料糖含量不宜超過20%[25]。Helland等[26]對(duì)大西洋鮭的研究指出，可消化糖的適宜量應(yīng)小于20%；李愛杰等[

46、27]也得出牙鲆的適宜糖水平為15%。本試驗(yàn)采用部分可消化糖代替部分蛋白質(zhì),隨著糖水平的增加，高糖組的糖含量增至30%，日本黃姑魚的生長(zhǎng)并沒有顯著變化，也沒有死亡現(xiàn)象出現(xiàn)。這些結(jié)果表明,日本黃姑魚可能對(duì)較高水平的糖具有一定的耐受性。</p><p>　　魚類對(duì)糖的利用不佳的原因有許多。早期的假說認(rèn)為，魚類（尤其是肉食性魚類）胰島素水平低、缺乏調(diào)節(jié)作用，類似哺乳動(dòng)物的胰島素依賴型糖尿病癥狀（Insulin-depe

47、ndent diabetes，IDDM）[28]，胰島素受體數(shù)量少、親和力弱[15,29]。但近年來的研究發(fā)現(xiàn)，魚類有胰島素受體[19]，攝入糖類后胰島素水平及其受體數(shù)量能適應(yīng)性上調(diào)[18]，胰島素水平接近甚至高于哺乳類[18]。這些研究結(jié)果均不支持關(guān)于魚類缺乏胰島素和胰島素受體的假說[15]。但是胰島素與受體(receptor)的結(jié)合能力大約只有老鼠的1/4[18]。因而魚類對(duì)糖類物質(zhì)利用性不佳的原因是因?yàn)橐葝u素抵抗所造成。</

48、p><p>　　目前的研究表明,TZDs具有減輕胰島素抵抗,增加胰島素敏感性的作用,其作用機(jī)制是通過激活過氧化物酶增殖活化受體γ(PPARγ),使葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)子(GLUT4)表達(dá)增加,減輕胰島素抵抗,促使胰島素發(fā)揮最大效能[30]。經(jīng)過八周的養(yǎng)殖，從實(shí)驗(yàn)結(jié)果處理分析來看，低糖組和高糖組在肝比、腸脂比之間沒有顯著差異，而添加了TZDs的高糖組卻顯著降低(P<0.05)。同時(shí)從肝臟的脂肪含量分析來看，低糖組和高糖組亦

49、無顯著差異，而含TZDs的高糖組也顯著降低。這說明：魚體吸收糖后，胰島素使全身各個(gè)組織加速攝取和儲(chǔ)存葡萄糖,尤其加速肝細(xì)胞和肌細(xì)胞攝取葡萄糖,并且促進(jìn)它們對(duì)葡萄糖的貯存和利用。王鏡巖認(rèn)為，在肝臟中,胰島素使吸收的葡萄糖大量轉(zhuǎn)化成糖原,并促進(jìn)葡萄糖轉(zhuǎn)變成脂肪酸,轉(zhuǎn)運(yùn)到脂肪組織貯存[31]。另一方面胰島素活化了丙酮酸脫氫酶磷酸酶而使丙酮酸脫氫酶激活，加速了糖酵解，吸收的糖類進(jìn)行有氧氧化，從而降低了肝臟和腸脂中脂肪含量。從背肌的脂肪含量來看，

50、含TZDs的高糖組脂肪含量顯著增加。王鏡巖認(rèn)為，這可能是胰島素加速了肝臟中葡萄糖合成脂肪酸,然后貯存到脂肪細(xì)胞中；同時(shí)把體內(nèi)一部分多余的糖分轉(zhuǎn)入到脂肪組織里，使其</p><p><b>　　結(jié)論</b></p><p>　　日本黃姑魚對(duì)較高水平的糖有一定的耐受性。添加TZDs能明顯提高日本黃姑魚對(duì)飼料中糖的利用性，對(duì)體組成和生化成分起到促進(jìn)作用；添加TZDs在改善日

51、本黃姑魚生長(zhǎng)上卻無明顯的效果，甚至體重有下降的趨勢(shì)，這可能與TZDs的添加量或其他因素有關(guān)，有待進(jìn)一步研究。</p><p><b>　　[參 考 文 獻(xiàn)]</b></p><p>　　[1] Hemre G I,Mommsen T P,Krogdahl A.Carbohydrates in fish nutrition：effects on growth,gluco

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