海洋科學(xué)畢業(yè)論文鮮活餌料中營養(yǎng)成分測定研究

1、<p><b>　　本科畢業(yè)論文</b></p><p><b>　?。?0 屆）</b></p><p>　　鮮活餌料中營養(yǎng)成分測定研究</p><p>　　所在學(xué)院 </p><p>　　專業(yè)班級 海洋科學(xué)

2、 </p><p>　　學(xué)生姓名 學(xué)號 </p><p>　　指導(dǎo)教師 職稱 </p><p>　　完成日期 年 月 </p><p><b>　　目錄</b></

3、p><p>　　鮮活餌料中營養(yǎng)成分測定研究錯誤!未定義書簽。</p><p><b>　　引言I</b></p><p><b>　　1材料與方法1</b></p><p>　　1.1樣品的采集與制備1</p><p>　　1.1.1采集時間1</p>&

4、lt;p>　　1.1.2采集方法及數(shù)量1</p><p><b>　　2化學(xué)分析4</b></p><p>　　2.1飼料中粗蛋白測定方法：1</p><p><b>　　3化學(xué)評價法10</b></p><p>　　3.1采用必需氨基酸指數(shù)EAAI和能量—蛋白比8</p>

5、;<p>　　3.1.1可消化能8</p><p>　　3.1.2能量—蛋白比8</p><p>　　3.1.3必須氨基酸指數(shù)8</p><p>　　總結(jié)錯誤!未定義書簽。</p><p><b>　　參考文獻11</b></p><p>　　致謝錯誤!未定義書簽。<

6、;/p><p><b>　　[摘要]</b></p><p>　　在天然水域中, 魚蝦以水生生物為食, 我國沿海及內(nèi)陸水域面積遼闊, 蘊藏著豐富的水產(chǎn)資源, 但對這些水產(chǎn)資源的營養(yǎng)成分分析研究不多, 為使配合餌料所含的營養(yǎng)成分適合于飼養(yǎng)動物的攝食、消化和生長, 對作為配合餌料原料的營養(yǎng)成分必需通過分析加以了解,&

7、#160;否則搭配原料就帶有盲目性。 本文分析了3種餌料源的一般營養(yǎng)成分含量、蛋白質(zhì)的氨基酸組成及可消化能, 并對其蛋白質(zhì)質(zhì)量進行了分析, 為研制人工配合餌料提供依據(jù)。由于餌料成分是復(fù)雜的, 更因外界環(huán)境因素的改變以及加工方法的不同, 都可能使一些成分的含量出現(xiàn)差異, 盡管如此, 作者認(rèn)為本文提供的各種漁用飼料的營養(yǎng)成分的數(shù)據(jù)對于研制配合飼料仍然是有益的。</p&

8、gt;<p>　　魚類作為變溫動物，與陸生動物相比，除了有其共性的營養(yǎng)要求外，還有獨特的營養(yǎng)和代謝特點。魚類對于蛋白質(zhì)有較高的需求量，需有10種必需氨基酸。對脂肪的利用率也較高。但對糖類的利用能力較差。它們可自由吸收和利用水中的鈣離子。由于魚類是生活在水中的變溫動物，所以基礎(chǔ)代謝低，其體溫和水環(huán)境一致，因而飼養(yǎng)所耗的飼料也比陸生動物低。 該文測定了3種餌料的水分，蛋白質(zhì)，脂肪，灰分，無氮浸出物和組纖維。計算了可消化

9、能和能量蛋白比，公式為：EPT=每公飼料的總能量（kj）/每公斤飼料的粗蛋白含量（g）。分析了粗蛋白中的氨基酸組成，用必須氨基酸指數(shù)評價了他們的營養(yǎng)價值。有利于養(yǎng)殖人員找到更適合于養(yǎng)殖魚類的鮮活餌料，增加以后的繁殖和產(chǎn)量。為漁民實現(xiàn)更好的經(jīng)濟價值。必需氨基酸指數(shù)。</p><p>　　用EAAI評價蛋白源對該動物的營養(yǎng)價值.當(dāng)n=6～12提出的評價標(biāo)準(zhǔn)為EAAI﹥0.95為優(yōu)質(zhì)蛋白源，0.86﹤EAAI﹤0.95

10、為良好蛋白源，0.75﹤EAAI﹤0.86為可用蛋白源EAAI﹤0.75為不適蛋白源。</p><p>　　[關(guān)鍵詞] 鮮活餌料、營養(yǎng)成分、 必需氨基酸指數(shù)、能量一蛋白比</p><p>　　[Abstract]</p><p>　　In natural waters, fish and shrimp to feed on aquatic, coastal and

11、inland waters of the vast area, rich in Aquatic resources, aquatic resources of the analysis of the nutritional content of not more than, in order to meet the appropriate nutrients contained in feed Together in the reari

12、ng of animals feeding, digestion and growth, and as with the nutritional content of feed ingredients must be the adoption ofSolution, or with raw materials to with blindness. This paper analyzes three kinds o</p&

13、gt;<p>　　In this paper, three kinds of food were measured moisture, protein, fat, ash, nitrogen-freeextract and group fibers. Calculated digestible energy and energy-protein ratio, analysis of the amino acid co

14、mposition of crude protein, aminoacid index used to evaluate their nutritional value. Culture is more conducive for people to find live bait fish farming, breeding and sub subsequent increase in production. For fishermen

15、 to achieve better economic value.</p><p>　　[Key words] Live bait Nutrients Essential amino acid index A protein ratio of energy</p><p><b>　　引言</b></p><p>　　魚類作為變溫

16、動物，與陸生動物相比，除了有其共性的營養(yǎng)要求外，還有獨特的營養(yǎng)和代謝特點。魚類對于蛋白質(zhì)有較高的需求量，需有10種必需氨基酸。對脂肪的利用率也較高。但對糖類的利用能力較差。它們可自由吸收和利用水中的鈣離子。由于魚類是生活在水中的變溫動物，所以基礎(chǔ)代謝低，其體溫和水環(huán)境一致，因而飼養(yǎng)所耗的飼料也比陸生動物低?！　◆~類食物營養(yǎng)的作用，主要是供給魚體生長和修補組織所必須的物質(zhì)及提供生理活動時所消耗的能量。魚類需要的基本營養(yǎng)素有蛋白質(zhì)、脂肪、

17、糖類、維生素和無機鹽前三種稱為基本能源物質(zhì)，在代謝過程中直接提供能量和修補組織。后二種為輔助能源物質(zhì)，除起調(diào)節(jié)組織機能作用外，無機鹽還參與組織的修建。人們通常稱后兩種物質(zhì)為微量元素。餌料中如果缺少微量元素，基本營養(yǎng)物質(zhì)就會得不到很好利用，將會使能量的轉(zhuǎn)化和生長受到限制。 　　魚類是生活在水中用鰓呼吸，以鰭游泳的脊椎動物。它們具有隨時攝取水分及適應(yīng)水棲的各種器官和功能，因而不會因餌料中缺水而影響魚體的生長代謝?！　?一)蛋白質(zhì)和氨基酸

18、；蛋白質(zhì)本身是高分子物質(zhì)，可以用酸堿或酶來催化水解為氨基酸。氨基酸是構(gòu)成蛋白質(zhì)的基本單位。魚類攝取的蛋白質(zhì)，</p><p><b>　　1材料與方法</b></p><p>　　1.1樣品的采集與制備</p><p><b>　　1.1.1采集時間</b></p><p>　　以每種餌料的收獲時間

19、做為采集時間，具體見表1</p><p>　　1.1.2采集方法及數(shù)量</p><p>　　對每一種飼料原料而言, 取魚所用部分作為收集對象。原始樣品按“ 幾何法” 從不同部位多點采取, 按四份法進行篩選, 數(shù)量為250一500克。取樣時首先測定樣品鮮重, 烘干后測定重量, 以備室內(nèi)分析。采樣的種類、部位、地點及時間列表1。</p><p><b>　　表

20、1 采樣情況</b></p><p>　　Table1 loacationg and source of samples</p><p><b>　　2.化學(xué)分析</b></p><p>　　2.1餌料中粗蛋白測定方法：</p><p><b>　　2.1.1原理</b></p&g

21、t;<p>　　蛋白質(zhì)是含氮的有機化合物。食品與硫酸和催化劑一同加熱消化，使蛋白質(zhì)分解，分解的氨與硫酸結(jié)合生成硫酸銨。然后堿化蒸餾使氨游離，用硼酸吸收后再以硫酸或鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液滴定，根據(jù)酸的消耗量乘以換算系數(shù)，即為蛋白質(zhì)含量。</p><p><b>　　2.1.2試劑</b></p><p>　　所有試劑均用不含氨的蒸餾水配制：硫酸銅，硫酸鉀，硫酸，2%

22、硼酸溶液，混合指示液1份0.1%甲基紅乙醇溶液與5份0.1%溴甲酚綠乙醇溶液臨用時混合，也可用2份0.1%甲基紅乙醇溶液與1份0.1%次甲基藍乙醇溶液臨用時混合。40%氫氧化鈉溶液。0.025mol/L硫酸標(biāo)準(zhǔn)溶液或0.05mol/L鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液。</p><p><b>　　2.1.3儀器</b></p><p>　　安全管，導(dǎo)管，汽水分離管，樣品入口，塞子冷凝管，

23、吸收瓶，隔熱液套，反應(yīng)管，蒸汽發(fā)生瓶。</p><p>　　2.2餌料中鈣測定方法：</p><p><b>　　2.2.1原理</b></p><p>　　將試樣中有機物破壞，鈣變成溶于水的離子，用草酸銨定量沉淀，用高錳酸鉀法間接測定鈣含量。</p><p>　　2.2.2試劑儀器和設(shè)備</p><

24、p>　　硝酸高氯酸：70%～72%。鹽酸溶液：1＋3。硫酸溶液：1＋3。氨水溶液：1＋1。草酸銨水溶液（42g/L）：稱取4.2g草酸銨溶于100mL水中。高錳酸鉀標(biāo)準(zhǔn)溶液［c(1/5KMnO4)＝0.05mol/L］的配制按GB/T 60規(guī)定。甲基紅指示劑（1g/L）：稱取0.01g甲基紅溶于100mL95%乙醇中。實驗室用樣品粉碎機或研缽。分樣篩：孔徑0.42mm(40目)。分析天平：感量0.0001g高溫爐：電加熱

25、，可控溫度在（550±20）℃。坩堝：瓷質(zhì)。容量瓶：100mL。 滴定管：酸式，25mL或50mL。玻璃漏斗：直徑6cm。定量濾紙：中速，7cm～9cm。移液管：10、20mL。燒杯：200mL。凱氏燒瓶：250 mL或500mL</p><p>　　2.2.3測定的步驟</p><p>　　稱取試樣2g～5g于坩堝中，精確至0.0002g，在電爐上小心炭化，再放入高溫

26、爐于550℃下灼燒3h（或測定粗灰分后連續(xù)進行），在盛灰坩堝中加入鹽酸溶液10mL和濃硝酸數(shù)滴，小心煮沸，將此溶液轉(zhuǎn)入100 mL容量瓶中，冷卻至室溫，用蒸餾水稀釋至刻度，搖勻，為試樣分解液。</p><p>　　準(zhǔn)確移取試樣分解液10mL～20mL（含鈣量20mg左右）于200mL燒杯中，加蒸餾水100mL，甲基紅指示劑2滴，滴加氨水溶液至溶液呈橙色，若滴加過量，可加鹽酸溶液調(diào)至橙色，再多加2滴使其呈

27、粉紅色（pH為2.5～3.0），小心煮沸，慢慢滴加熱草酸銨溶液10mL，且不斷攪拌，如溶液變橙色，則應(yīng)補加鹽酸溶液使其呈紅色，煮沸數(shù)分鐘，放置過夜使沉淀陳化（或在水浴上加熱2h）。 用定量濾紙過濾，用1＋50的氨水溶液洗沉淀6～8次，至無草酸根離子（接濾液數(shù)毫升加硫酸溶液數(shù)滴，加熱至80℃，再加高錳酸鉀溶液（36.7）1滴，呈微紅色，且半分鐘不褪色）。 將沉淀和濾紙轉(zhuǎn)入原燒杯中，加硫酸溶液10mL、蒸餾水50mL，加熱至

28、75℃～80℃，用高錳酸鉀標(biāo)準(zhǔn)溶液（4.7）滴定，溶液呈粉紅色且半分鐘不褪色為終點。同時進行空白溶液的測定。</p><p>　　2.3餌料中水分測定方法</p><p><b>　　2..3.1原理</b></p><p>　　試樣在105±2℃烘箱內(nèi)，在大氣壓下烘干，直至恒重，逸失的重量為水分2.3.2儀器設(shè)備：實驗室用樣品粉碎機

29、或研體。分樣篩：孔徑0.45mm（40目）。分析天平：感量0.0001g。電熱式恒溫烘箱：可控溫度105±2℃。稱樣皿：玻璃或鋁質(zhì)，直徑40mm以上，高度25mm以下。干燥器：用氯化鈣（干燥試劑）或變色硅膠作干燥劑。</p><p><b>　　2.3.3測定步驟</b></p><p>　　潔凈稱樣皿，在105士2℃烘箱中烘1h，取出，在干燥器中冷卻30m

30、in，稱準(zhǔn)至0.0002克，再烘干30min同樣冷卻，稱重，直至兩次重量之差小于0.0005克為恒重。</p><p>　　用已恒重稱樣皿稱取兩份平行試樣，每份2--5克（含水重O.lg以上，樣品厚度4mm以下)。準(zhǔn)確至0 .0002g， 不蓋稱樣皿蓋，在105±2℃烘箱中烘3h(以溫度到達105℃開始計時)，取出，蓋好稱樣皿蓋，在干燥器中冷卻30min，稱重。再同樣烘干1h，冷卻，稱重，直至兩次稱重之

31、重量差小于0.002g</p><p><b>　　2.3.4結(jié)果計算</b></p><p>　　公式; 水分%={（烘干前試樣及稱樣皿重-烘干后試樣及稱樣皿重）÷（烘干前試樣及稱樣皿重-已恒重的稱樣皿重）}×100</p><p>　　重復(fù)性：每個試樣應(yīng)取兩個平行樣進行測定，以其算術(shù)平均值為結(jié)果。兩個平行樣測定值相差不得

32、超過0.2%，否則重做。</p><p><b>　　注意事項</b></p><p>　　A：如果試樣按4.3步驟進行過預(yù)先干燥處理，應(yīng)按下式計算原來試樣中所含水分總量：</p><p>　　原試樣的總水分%=預(yù)干燥減重%+(100-預(yù)干燥減重%)×風(fēng)干試樣水分%。</p><p>　　B：某些含脂肪高的樣品

33、，烘干時間長反而增重，乃脂肪氧化所致，應(yīng)以增重前那次重量為準(zhǔn)。</p><p>　　C：含糖分高的易分解或易焦化試樣，應(yīng)使用減壓干燥法（70度，600mm汞柱以下，烘干5小時）測定水分。</p><p>　　2.4餌料中粗纖維測定方法</p><p><b>　　2.4.1原理</b></p><p>　　用濃度準(zhǔn)確的酸

34、和堿，在特定條件下消煮樣品，再用乙醇除去可溶物，經(jīng)高溫灼燒扣除礦物質(zhì)的量，所余量為粗纖維。它不是一個確切的化學(xué)實體，只是在公認(rèn)強制規(guī)定的條件下測出的概略成分，其中以纖維素為主，還有少量半纖維素和木質(zhì)素。</p><p>　　2.4.2試劑和設(shè)備</p><p>　　硫酸（GB 625）溶液：（0.128±0.005）mol/L，用氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)溶液標(biāo)定。氫氧化鈉（GB&#

35、160;629）溶液：（0.313±0.005）mol/L，用鄰苯二甲酸氫鉀法標(biāo)定。酸洗石棉（HG 3－1062）。95%乙醇（GB 679）。乙醚（HG 3－1002）。正辛醇（防泡劑）。實驗室用樣品粉碎機。分樣篩：孔徑1mm。分析天平：感量0.0001g。電加熱器（電爐），可調(diào)節(jié)溫度。電熱恒溫箱（烘箱）：可控制溫度在130℃。高溫爐：有高溫計可控制溫度在500℃～600℃。消煮器：有冷凝球的6

36、00mL高型燒杯或有冷凝管的錐形瓶。消煮器：有冷凝球的600mL高型燒杯或有冷凝管的錐形瓶。古氏坩堝：30mL，預(yù)先加入酸洗石棉懸浮液30mL（內(nèi)含酸洗石棉0.2g～0.3g）再抽干，以石棉厚度均勻，不透光為宜。上下鋪兩層玻璃纖維有助于過濾。干燥器：以變色硅膠為干燥劑。</p><p><b>　　2.4.3分析步驟</b></p><p>　　稱取1g～2g試樣（準(zhǔn)

37、確至0.0002g），用乙醚脫脂，（含脂肪大于10%必須脫脂，含脂肪不大于10%，可不脫脂），放入消煮器，加濃度準(zhǔn)確且已沸騰的硫酸溶液200mL和1滴正辛醇，立即加熱，應(yīng)使其在2min內(nèi)沸騰，調(diào)整加熱器，使溶液保持微沸，且連續(xù)微沸30min，注意保持硫酸濃度不變。試樣不應(yīng)離開溶液沾到瓶壁上。隨后抽濾，殘渣用沸蒸餾水洗至中性后抽干。用濃度準(zhǔn)確且已沸騰的氫氧化鈉溶液將殘渣轉(zhuǎn)移至原容器中并加至200mL，同樣準(zhǔn)確微沸30min，立即在鋪有石棉

38、的古氏坩堝上過濾，先用25mL硫酸溶液洗滌，殘渣無損失地轉(zhuǎn)移至坩堝中，用沸蒸餾水洗至中性，再用15mL乙醇洗滌，抽干。將坩堝放入烘箱，于（130±2）℃下烘干2h，取出后在干燥器中冷卻至室溫，稱重，再于（550±25）℃高溫爐中灼燒30min，取出后于干燥器中冷卻至室溫后稱重。</p><p>　　2.5餌料中粗灰分測定方法</p><p><b>　　2.5

39、.1原理</b></p><p>　　試料在550℃灼燒后所得殘渣，用質(zhì)量百分率來表示。殘渣中主要是氧化物、鹽類等礦物質(zhì)，也包括混入飼料中的砂石、土等，故稱粗灰分。</p><p>　　2.5.2儀器與設(shè)備</p><p>　　實驗室用樣品粉碎機或研缽。分樣篩孔徑0.45mm（40目）。分析天平分度值0.0001g。高溫爐 有高溫計且可控制爐溫

40、在550±20℃。坩堝瓷質(zhì)，容積50mL。干燥器 用氯化鈣（干燥試劑）或變色硅膠作干燥劑。</p><p>　　2.5..3試樣的選取和制備</p><p>　　取具有代表性試樣，粉碎至40目。用四分法縮減至200g，裝于密封容器。防止試樣的成分變化或變質(zhì)。</p><p><b>　　2.5.4測定步驟</b></p>

41、<p>　　將干凈坩堝放入高溫爐，在550±20℃下灼燒30min。取出，在空氣中冷卻約1min，放入干燥器冷卻30min，稱其質(zhì)量。再重復(fù)灼燒，冷卻、稱量，直至兩次質(zhì)量之差小于0.0005g為恒質(zhì)。</p><p>　　在已恒質(zhì)的坩堝中稱取2～5g試料（灰分質(zhì)量0.05g以上），準(zhǔn)確至0.0002g，在電爐上小心炭化，在炭化過程中，應(yīng)將試料在較低溫度狀態(tài)加熱灼燒至無煙，爾后升溫灼燒至樣品無

42、炭粒，再放入高溫爐，于550±20℃下灼燒3h。取出，在空氣中冷卻約1min，放入干燥器中冷卻至30min，稱取質(zhì)量。再同樣灼燒1h，稱量，直至兩次質(zhì)量之差小于0.001g為恒質(zhì)。</p><p>　　2.5.5結(jié)果計算與分析</p><p>　　粗灰分（%）=(M2-M0)/(M1-M0)×100。</p><p>　　式中M0──為恒質(zhì)空坩堝

43、質(zhì)量，g。</p><p>　　M1──為坩堝加試料的質(zhì)量，g。</p><p>　　M2──為灰化后坩堝加灰分的質(zhì)量，g。</p><p>　　所得結(jié)果應(yīng)表示至0.01％。</p><p>　　2.6餌料中粗脂肪測定方法</p><p><b>　　2.6.1原理</b></p>

44、<p>　　索氏（Soxhlet)脂肪提取器中用乙醚提取試樣，稱提取物的重量，除脂肪外還有有機酸，磷脂，脂溶性維生素，葉綠素等，因而結(jié)果稱粗脂肪或乙醚提取物。</p><p>　　2.6.2試劑儀器設(shè)備</p><p>　　無水乙醚（分析純）。實驗室用樣品粉碎機或研缽。分樣篩：孔徑：0.45mm。分析天平：感量0.0001g。電熱恒溫水浴鍋：室溫～100℃。恒溫烘箱：50～200

45、℃。索氏脂肪提取器（帶球形冷凝管）：100或150mL。索氏脂肪提取儀。濾紙或濾紙筒：中速，脫脂，干燥器：用氯化鈣（干燥級）或變色硅膠為干燥劑。</p><p><b>　　2.6.3分析步驟</b></p><p>　　索氏提取器應(yīng)干燥無水。抽提瓶（內(nèi)有沸石數(shù)粒）在105±2℃烘箱中烘干60min，干燥器中冷卻30min，稱重。再烘干30min，同樣冷卻稱

46、重，兩次重量之差小于0.0008g為恒重。</p><p>　　稱取試樣1～5g（準(zhǔn)確至0.0002g），于濾紙筒中，或用濾紙包好，放入105℃烘箱中，烘干120min（或成測定水分后的干試樣，折算成風(fēng)干樣重），濾紙筒或包放入抽提管，在抽提瓶中加無水乙醚60～100mL，在60～75℃的水?。ㄓ谜麴s水）上加熱，使乙醚回流，控制乙醚回流次數(shù)為每小時約10次，共回流50次（含油高的試樣約70次）或檢查抽提管流出的乙醚

47、揮發(fā)后不留下油跡為抽提終點。</p><p>　　取出試樣，仍有原提取器回收乙醚直至抽提瓶全部收完，取下抽提瓶，在水浴上蒸去殘余乙醚。擦凈瓶外壁。將抽提瓶放入105±2℃烘箱中烘干120min，干燥器中冷卻30min稱重，再烘干30min，同樣冷卻稱重，兩次重量之差小于0.001g為恒重。</p><p><b>　　2.6.4結(jié)果計算</b></p&

48、gt;<p>　　粗脂肪（%）=(m2-m1)×100/m</p><p>　　式中：m--風(fēng)干試樣重量，g。</p><p>　　m1--已恒重的抽提瓶重量，g。</p><p>　　m2--已恒重的盛有脂肪的抽提瓶重量，g。</p><p>　　每個試樣取兩次平行進行測定，以其算術(shù)平均值為結(jié)果。粗脂肪含量在≥10%

49、時，允許相對偏差為3%。粗脂肪含量＜10%時，允許相對偏差為5%。</p><p>　　2.7餌料中總磷量的測定方法</p><p><b>　　2.7.1原理</b></p><p>　　將試樣中的有機物破壞，使磷元素游離出來，在酸性溶液中，用釩鉬酸銨處理，生成黃色［(NH4)3PO4NH4VO3·16MoO3］絡(luò)合物，在波長420

50、nm下進行比色測定。</p><p><b>　　2.7.2試劑</b></p><p>　　實驗室用水應(yīng)符合GB/T 6682中三級水的規(guī)格，本標(biāo)準(zhǔn)中所用試劑，除特殊說明外，均為分析純。鹽酸：1+1水溶液。硝酸。高氯酸。釩鉬酸銨顯色劑：稱取偏釩酸銨1.25g，加水200mL加熱溶解，冷卻后再加入250mL硝酸，另稱取鉬酸銨25g，加水400mL加熱溶解，在冷卻的條件

51、下，將兩種溶液混合，用水定容1000mL。避光保存，若生成沉淀，則不能繼續(xù)使用。磷標(biāo)準(zhǔn)液：將磷酸二氫鉀在105℃干燥1h，在干燥器中冷卻后稱取0.2195g溶解于水，定量轉(zhuǎn)入1000mL容量瓶中，加硝酸3mL，用水稀釋至刻度，搖勻，即為50mg/mL的磷標(biāo)準(zhǔn)液。</p><p>　　2.7.3儀器和設(shè)備</p><p>　　實驗室用樣品粉碎機或研缽。分樣篩：孔徑0.42mm(40目)。分析

52、天平：感量0.0001g。分光光度計：可在420nm下測定吸光度。比色皿：1.0cm。高溫爐：可控溫度在（550±20）℃。瓷坩堝：50mL。容量瓶：50、100、1000mL。移液管：1.0、2.0、3.0、5.0、10.0ml。三角瓶：250mL。凱氏燒瓶：125、250mL?？烧{(diào)溫電爐：1000W。</p><p><b>　　2.7.4試樣制備</b></p>

53、<p>　　取有代表性試樣2kg，用四分法將試樣縮分至200g，粉碎過0.42mm孔篩，裝入樣品瓶中，密封保存?zhèn)溆谩?lt;/p><p><b>　　2.7.5測定步驟</b></p><p>　　稱取試樣0.5g～5g（精確至0.0002g）于凱氏燒瓶中，加入硝酸30mL，小心加熱煮沸至黃煙逸盡，稍冷，加入高氯酸10mL，繼續(xù)加熱至高氯酸冒白煙（不得蒸干），

54、溶液基本無色，冷卻，加水30mL，加熱煮沸，冷卻后，用水轉(zhuǎn)移至100mL容量瓶中，并稀釋至刻度，搖勻，為試樣分解液。</p><p>　　稱取試樣0.2 g～1g（精確至0.0002g）于100mL燒杯中。緩緩加入鹽酸10ｍL，使其全部溶解，冷卻后轉(zhuǎn)入100mL容量瓶中，用水稀釋至刻度，搖勻，為試樣分解液。</p><p>　　準(zhǔn)確移取試樣分解液1.0mL～10.0mL（含磷量50mg～7

55、50mg）于50mL容量瓶中，加入釩鉬酸銨顯色劑10mL，用水稀釋至刻度，搖勻，常溫下放置10min以上，用1cm比色皿在420nm波長下測定試樣分解液的吸光度，在工作曲線上查得試樣分解液的含磷量。</p><p><b>　　2.7.6結(jié)果計算</b></p><p>　　X（%）=  (m1 x v )/(m x v1x 100000

56、0) ×100 = (m1 x v )/ (m x v1x 10000)。</p><p>　　式中X——以質(zhì)量分?jǐn)?shù)表示的磷含量，%。</p><p>　　m1——由工作曲線查得試樣分解液磷含量，mg。</p><p>　　V——試樣分解液的總體積，mL。</p><p>　　m——試樣的質(zhì)量，g。&l

57、t;/p><p>　　V1——試樣測定時移取試樣分解液體積，mL。</p><p>　　每個試樣稱取兩個平行樣進行測定，所得的結(jié)果應(yīng)表示至小數(shù)點后兩位。</p><p><b>　　3 化學(xué)評價法</b></p><p>　　3.1采用必需氨基酸指數(shù)EAAI和能量—蛋白比</p><p><b&

58、gt;　　3.1.1可消化能</b></p><p>　　關(guān)于魚用飼料可消化能的計算，目前尚無統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn)。本文采用農(nóng)業(yè)組織（1983）使用的標(biāo)準(zhǔn)。表2</p><p>　　表2 計算魚用飼料可消化能的標(biāo)準(zhǔn)</p><p>　　Table 2 criterion for caculating digestible energy of fish feed&l

59、t;/p><p>　　3.1.2能量—蛋白比</p><p>　　EPR=每公斤飼料的總能量（KJ）/每公斤飼料的粗蛋白含量（g）。</p><p>　　3.1.3必需氨基酸指數(shù)</p><p>　　公式中aai為餌料原料中某必需氨基酸占必需氨基酸的總量的百分?jǐn)?shù)。</p><p>　　AAI為參比蛋白中該必需氨基酸總量的百

60、分?jǐn)?shù)。</p><p><b>　　4總結(jié)</b></p><p>　　作為飼料蛋白質(zhì)的營養(yǎng)價值, 不僅要看飼料蛋白質(zhì)的多少, 而且還要看其含氨基酸的數(shù)量和比例, 蛋白質(zhì)的生理價值土要根據(jù)氨基酸在吸收后的體內(nèi)保留量, 即飼料中氨基酸在體內(nèi)的保留量與吸收量之比。在20在種氨基酸中對動物來說, 必需氨基酸為10種, 氨基酸在體內(nèi)保留量的多少主要取決于必需氨基酸的質(zhì)與量。據(jù)

61、報道飼養(yǎng)動物對飼料中氨基酸的需要與其自身的氨基酸顯著相關(guān)。</p><p>　　表3 一般營養(yǎng)成分含量與能量蛋白比</p><p>　　Table 3 Nutritional composition and energy-protein ratio of fish</p><p>　　計算了3種飼料的必需氨基酸指數(shù)EAAI, 由于必需氨基酸指數(shù)反映了飼料蛋白源的必需

62、氨基酸組成與喂養(yǎng)對象的必需氨基酸組成的擬合程度, 因此可以喂養(yǎng)動物蛋白為參比, 用EAAI評價蛋白源對該動物的營養(yǎng)價值.當(dāng)n=6～12提出的評價標(biāo)準(zhǔn)為EAAI﹥0.95為優(yōu)質(zhì)蛋白源，0.86﹤EAAI﹤0.95為良好蛋白源，0.75﹤EAAI﹤0.86為可用蛋白源EAAI﹤0.75為不適蛋白源（馮東勛等，1997）。</p><p>　　下表4 列出了3種餌料粗蛋白中必需氨基酸的組成</p><

63、;p>　　Table 4 Esential amino acid composition of 3 fish feeds</p><p>　　表中氨基酸是鮮活餌料烘干后測定的數(shù)據(jù)。</p><p>　　表5是部分餌料飼養(yǎng)草魚，鯉魚，對蝦，黑鯛，真鯛和牙鲆的EAAI值。表中草魚，鯉魚，對蝦，黑鯛，真鯛和牙鲆的氨基酸取自≤食物成分表≥（中國預(yù)防醫(yī)學(xué)科學(xué)營養(yǎng)與衛(wèi)生研究所 1991）。從EA

64、AI值來看，同一種飼料對不同養(yǎng)殖種類的限制氨基酸是不同否認(rèn)，對同一養(yǎng)殖種類，不同的飼料的限制氨基酸也有差別。上述計算EAAI依據(jù)的必需氨基酸是由氨基酸自動分析儀測定的，但是對不同動物來說飼料蛋白源的消化吸收率達不到百分之一百。因此，若以蛋白源的可消化必需氨基酸指數(shù)，則能更為準(zhǔn)確地評價蛋白源對喂養(yǎng)動物（參比蛋白）的營養(yǎng)價值，此外因飼料中的色氨酸不易測定，故計算EAAI值時未計色氨酸。</p><p>　　表5餌料的

65、必需氨基酸指數(shù)（EAAI）</p><p>　　Table 5 The essential amino acid of fish feed</p><p>　　蛋白質(zhì)是維持魚體生命和活動所必需的營養(yǎng)素。它是構(gòu)成魚體主要物質(zhì), 也是能量的來源, 所以魚類對蛋白質(zhì)的要求要高于畜禽。蛋白質(zhì)不能由其它營養(yǎng)物合成, 而必需從食物中獲得。</p><p>　　飼料只有蛋白質(zhì)指

66、標(biāo), 而缺乏氨基酸指標(biāo), 就不能反映出飼料蛋白質(zhì)生理價的高低因為不同蛋白質(zhì)所含氨基酸的比例是不同的。蛋白質(zhì)大約由20余種氨基酸組成, 其中有10種不能在魚體內(nèi)合成, 必需由飼料供給, 稱為必需氨基酸。經(jīng)研究證明, 魚類的必需氨基酸是精氨酸、組氨酸、異亮氨酸、亮氨酸、賴氨酸、蛋氨酸、苯丙氨酸、蘇氨酸、色氨酸和擷氨酸。</p><p>　　魚類必需氨基酸需要量的確定, 一般采用結(jié)晶氨基酸混合組成基礎(chǔ)飼料十不同梯度的待

67、測氨基酸逐一測定。或者用高營養(yǎng)價值的蛋白為蛋白源進行投喂實驗, 然后分析魚體蛋白氨基酸組成, 從魚體氨基酸增加量換算獲得。</p><p>　　脂肪對于魚類是重要的, 因為它是必需脂肪酸和能量來源。在營養(yǎng)生理意義上說，動物和魚類所需的是不飽和脂肪酸，從中說明脂肪的質(zhì)量是重要的。此外, 脂肪又是脂溶性維生素的載體。魚類對脂肪一般有較高的消化率。</p><p>　　碳水化合物也是魚飼料的主要

68、能量來源。此外, 碳水化合物提供的糖亦是動物細胞原生質(zhì)的基本成分, 也是在體內(nèi)合成脂肪酸和某些氨基酸的原料。魚對碳水化合物的利用程度, 由于魚的種類、食性不同而有很大差異。肉食性魚對飼料中碳水化合物含量一般要求是20％以下, 雜食性魚適宜范圍在30—40％。</p><p>　　魚類由于消化系統(tǒng)結(jié)構(gòu)簡單, 亦缺乏纖維素分解酶。因此對碳水化合物中纖維素的利用能力非常低。飼料中纖維含量過高會導(dǎo)致消化抑制, 影響飼料營

69、養(yǎng)素的有效利用。</p><p>　　通過查閱文件我們知道了蛋白質(zhì)，脂肪酸等物質(zhì)對與魚類來說的重要性和具體的吸收程度。我們能更有效地分析和研究出魚類所需的餌料中的營養(yǎng)成分。</p><p><b>　　參考文獻</b></p><p>　　[1]馮東勛, 趙保國利用必需氨基酸指數(shù)評價新飼料蛋白源.中國飼料[J],1997,21（7）：

70、10~13.</p><p>　　[2]截祥慶, 楊國華,青魚飼料最適能量蛋自比的研究.水產(chǎn)學(xué)報[J], 1988,12（1）：35~41.</p><p>　　[3]虞冰如,楊雄,日本沼蝦最適蛋白質(zhì),脂肪含量及能量蛋白比的研究,水產(chǎn)學(xué)報[J], 1990,11（1）321~327.</p><p>　　[4]廖朝興等,飼料配方中蛋白質(zhì)含量對池養(yǎng)草魚的影響

71、.淡水漁業(yè)[J], 1986,4:16~19.</p><p>　　[5]雍文岳等,飼料中脂肪對草魚生長的影響.淡水漁業(yè)[J], 1985,6:11~14.</p><p>　　[6]黃忠志等,飼料配方中纖維素含量對草魚生長及飼料利用的影響.淡水漁業(yè)[J], 1983,6:1~4.</p><p>　　[7]游文章等,草魚對飼料中磷需要量研究.水產(chǎn)學(xué)報[J], 19

72、87,11（4）:265~292.</p><p>　　[8]C.G.Carter et.al, The bioenergentics of grass carp,(ctenopharyngodon idella val):Energy allocation at different phames of nutrition[J], Journal of fish biology, 1991,39:873~887.

73、</p><p>　　[9]Dabrowski, Protein requirments of grass Carpfry.aquaculture[J], 1977,12:63~73.</p><p>　　[10]Takeda.M..S.Shunen .H.Kaijiyama and T Kaisyo The effect of dietary calorie-protein ratio