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文檔簡介
1、目的:
1.觀察并檢測人臍帶間充質(zhì)干細胞體外培養(yǎng)衰老過程中細胞形態(tài)學、表型、生長動力學及誘導分化能力等生物學特性的改變;
2.檢測人臍帶間充質(zhì)干細胞體外培養(yǎng)衰老過程中基因表達譜的改變并探討其可能的機制。
方法
1.細胞培養(yǎng):用組織塊貼壁法培養(yǎng)人臍帶間充質(zhì)干細胞,取第3代細胞作為對照組,連續(xù)培養(yǎng)到第15代的細胞為衰老組,倒置顯微鏡下觀察細胞形態(tài),并分別制成細胞爬片掃描電鏡觀察并拍照。
2、
2.生長增殖:分別取對照組和衰老組細胞,接種于96孔培養(yǎng)板中,各設(shè)8復孔,培養(yǎng)6天。每日檢測在450nm波長處測吸光值(OD值),繪制細胞生長曲線。
3.表型檢測:對照組和衰老組細胞消化后充分吹打成單細胞懸液,使用流式細胞儀檢測并分析兩組細胞CD34、CD45、CD44和CD105等表型變化。
4.誘導分化能力鑒定:將對照組和衰老組細胞置于不同的誘導培養(yǎng)液中向成骨細胞及成脂細胞誘導分化,誘導分
3、化14天后,進行固定,并分別進行相應的染色觀察誘導分化差異。
5.基因表達譜分析:細胞洗滌后加入Trizol試劑,提取總RNA,進行基因表達譜芯片雜交、檢測和數(shù)據(jù)分析,并用DNA芯片掃描儀行微陣列掃描。將掃描結(jié)果進行標準化分析,與對照組相比|log2Ratio|>2(4-foldchange)為差異表達,并進行GO及KEGGpathway分析。
6.PCR驗證:根據(jù)基因表達譜的結(jié)果,選取了多個典型的差異基因進
4、行實時定量PCR驗證。檢測對照組和衰老組細胞BAX,F(xiàn)ADD,JAK2,IGF3BP5,PDK1,Col-Ⅲ,Col-Ⅳ,SMAD2,SAMD4,BMPR2,CCND2等基因的差異表達。
結(jié)果
1.細胞形態(tài):對照組細胞呈典型的成纖維狀,每平方毫米可達500個細胞;衰老組細胞個體差異較大,細胞變得寬大,每平方毫米僅有約150個細胞,衰老細胞核質(zhì)比減小。掃描電鏡下可見年輕組細胞形態(tài)飽滿,表面微絨毛分布均勻,而衰老
5、組細胞偽足增多,整體扁平。
2.增殖情況:對照組和衰老組生長曲線在接種后都有一個停滯期(12-24小時),然后進入增殖期,對照組細胞能更快的進入增殖期,并在第5天達到更高的細胞數(shù)量后進入平臺期。而衰老組停滯期長,進入增殖期后第3天進入平臺期,最終的細胞數(shù)量也少。
3.表型檢測:根據(jù)流式細胞儀檢測結(jié)果,對照組和衰老組細胞CD34和CD45均為陰性表達,CD44和CD105均為高表達,組間陽性率表達并無顯著差異。
6、
4.分化能力:在適當?shù)姆只瘲l件誘導下,對照組和衰老組細胞均能向成骨和脂肪細胞分化:向成骨細胞誘導14天后大部分細胞出現(xiàn)鈣化胞外基質(zhì),茜素紅S染色陽性堿性磷酸酶染色陽性;向脂肪細胞誘導分化14天后約50%的細胞內(nèi)出現(xiàn)油紅O陽性脂肪顆粒。這些結(jié)果證明所獲得的貼壁細胞符合間充質(zhì)干細胞的特征,與對照組細胞相比,衰老組細胞誘導分化能力顯著降低。
5.差異基因信號通路及基因聚類分析:將衰老組細胞與對照組差異表達的基因進
7、行KEGGpathway分析(p<0.05),可見衰老組顯著上調(diào)通路有20條,其中包括自身免疫病、退行性疾病相關(guān)通路,下調(diào)通路49條,涉及通路包括合成代謝、細胞外基質(zhì)、物質(zhì)代謝和細胞增殖等。對41000+條基因進行檢測,差異基因多達8000個,對顯著差異的2000個基因進行聚類分析,顯示差異基因涉及轉(zhuǎn)錄、翻譯、生物合成、物質(zhì)代謝、信號轉(zhuǎn)導、細胞增殖、細胞遷移、細胞間連接等多方面。
6.PCR驗證:熒光定量PCR示衰老組細胞
8、與對照組細胞相比,BAX,F(xiàn)ADD,JAK2,IGF3BP5,PDK1和MGMT等基因在衰老細胞中表達上調(diào),而Col-Ⅲ,Col-Ⅳ,SMAD2,SAMD4,BMPR2,CCND2和PAK2等基因表達下調(diào)。
結(jié)論
1.第3代對照組細胞及第15代衰老組細胞具有增殖潛能、相同的細胞表型,并能向成骨、脂肪細胞誘導分化,但衰老組細胞在形態(tài)學、增殖速度和誘導分化的能力均較對照組降低。
2.體外培養(yǎng)人臍帶間
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