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文檔簡介
1、目的:大面積顱骨缺損的修復一直是神經外科臨床工作的一個重點,其關鍵問題是修復材料的來源,而傳統(tǒng)的修復材料存在各種各樣的缺點。隨著組織工程的飛速發(fā)展,體外預構的組織工程骨有可能為顱骨缺損提供較理想的修復方式。本實驗探討骨髓間充質干細胞(BMSCs)的生物學特性和成骨分化能力,研究以BMSCs為種子細胞、10%珊瑚羥基磷灰石(CHA)為細胞外基質材料構建的組織工程骨的成骨能力。 一、鼠BMCs的生物學特性和向成骨細胞誘導分化的能力
2、 方法:以貼壁篩選法獲得鼠BMSCs,原代培養(yǎng)后1:3傳代,分別接種于普通 DMEM培養(yǎng)基(A組)和添加成骨誘導劑(含10<'-9>mol/L地塞米松(DEX)、10mmol/L β-甘油磷酸鈉和50mg/L L-抗壞血酸(bASC))的DMEM培養(yǎng)基(B組)。定期更換培養(yǎng)基,每日在倒置顯微鏡下觀察細胞生長狀況和形態(tài)變化。用MTT法分析BMSCs在兩種培養(yǎng)條件下的生長活力。檢測兩種培養(yǎng)條件下BMSCs向成骨細胞分化的指標,包括定量
3、法檢測第5、10、15、20天時堿性磷酸酶(ALP)的表達,免疫組化法檢測第4周時BMSCs分泌I型膠原和四環(huán)素熒光法檢測第5周時礦化結節(jié)的形成。 結果:貼壁篩選法從骨髓中獲得可貼壁增殖、呈紡錘形的BMSCs。在普通培養(yǎng)(A組)和成骨誘導培養(yǎng)(B組)條件下BMSCs從第3天開始快速增殖,第8天達到最高峰;在3-8天細胞數兩組間有顯著差異性。ALP定量檢測示B組 BMSCs在15天時表達量明顯升高,有顯著差異性。4周時I型膠原免疫
4、組化B組陽性率90%,A組無陽性細胞。5周時礦化結節(jié)四環(huán)素染色于熒光顯微鏡下可見B組礦化結節(jié)呈黃綠色,A組無礦化結節(jié)。 結論:骨髓是良好的間充質干細胞來源,通過貼壁法能從鼠骨髓中提取到BMSCs,經過培養(yǎng)傳代后可獲得足量的細胞。10<'-9>mol/L DEX、10mmol/Lβ-甘油磷酸鈉和50mg/LL-ASC聯(lián)合誘導下,能夠明顯促進BMSCs向成骨方向的分化,表現(xiàn)為ALP的表達、I型膠原的分泌和礦化結節(jié)形成,是促使BMSC
5、s向成骨方向分化的良好的誘導劑。通過誘導BMSCs成骨分化并結合細胞形態(tài)學觀察,可以初步鑒定所獲得的成纖維樣細胞符合BMSCs的特點。 二、鼠BMsCs復合10%珊瑚羥基磷灰石修復顱骨缺損 方法:原代培養(yǎng)的鼠BMSCs以1:3傳代,接種于添加成骨誘導劑(10<'-9>mol/LDEX、10mmol/L β-甘油磷酸鈉和50mg/L L-ASC)的DMEM培養(yǎng)基。定期更換培養(yǎng)基,每日在倒置顯微鏡下觀察細胞生長狀況和形態(tài)變化
6、。收集第4代經成骨誘導的細胞,以5×10<'7>/ml的密度接種于10%CHA,培養(yǎng)1,3和7天后作掃描電鏡檢查。以培養(yǎng)7天的10%CHA+BMSCs復合物植入兔顱骨直徑2.5cm缺損處為實驗組(A組,n=8);單純植入CHA(B組,n=4)和無任何植入物(C組,n=4)為對照組。A組于6和12周、B和C組于12周時行X線檢查;行X線后分別處死動物,觀察修復后顱骨表面的完整性、硬度、與周圍自體骨質的結合情況等;然后取材固定、脫鈣、包埋、
7、切片,行HE染色。 結果:BMSCs向成骨誘導分化后,與10%CHA復合培養(yǎng)3-7天,掃描電鏡顯示細胞能在10%CHA很好地黏附生長。大體觀察可見A組6、12周時新生骨質地硬,與周圍自體骨結合緊密;B組12周時表面粗糙,呈顆粒狀,質地軟,周圍包繞軟組織囊;C組僅有軟組織填充。X線檢查可見A組植入物與自體骨密度基本一致,兩者結合緊密;B組密度明顯降低,呈顆粒狀密度影,和自體骨結合不緊密;C組僅可見軟組織密度影。HE染色示A組有大量
8、新骨形成,新生骨之間相互結合,有血管長入,未見炎細胞和淋巴細胞浸潤。B組可見材料明顯降解,無新生骨。C組僅可見結締組織。 結論:10%CHA有良好的生物相容性、良好的細胞材料表面、適當的生物降解性和三維立體結構,是骨組織工程良好的細胞外基質材料。BMSCs是骨組織工程理想的種子細胞,可在10%CHA表面緊密黏附生長。以BMSCs為種子細胞,10%CHA為支架材料構建的組織工程骨,在兔顱骨缺損處有明顯的成骨,無明顯的免疫排斥反應,
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