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文檔簡介
1、研究背景:
維生素D3是目前臨床上治療骨質疏松的常用藥物,它在體內通過羥化生成活性代謝產物1,25(OH)2D3(1α,25-dihydroxyvitaminD3)而發(fā)揮生理作用。1,25(OH)2D3是一種具有多種生物效應的激素前體,其主要是通過與靶細胞內的維生素D受體(VitaminDreceptor,VDR)結合后調節(jié)各種基因的表達,從而發(fā)揮其生理效應。它具有促進腸道鈣和磷的吸收,促進腎小管對鈣、磷的重吸收的作用。它
2、一方面可以協(xié)同甲狀旁腺激素刺激骨組織脫鈣,提高血鈣、磷濃度;另一方面也可以抑制甲狀旁腺激素的合成釋放,從而抑制甲狀旁腺激素的骨溶解作用,使骨丟失減少。但是目前關于1,25(OH)2D3對骨形成及成骨細胞作用的報道仍很不一致。部分研究認為1,25(OH)2D3可誘導成骨細胞的分化成熟,對骨組織的形成有直接的促進作用。而另外一些研究則認為1,25(OH)2D3對成骨細胞有明顯的抑制作用,直接抑制骨形成。因此,1,25(OH)2D3對骨形成的
3、作用及機制仍需要進一步的研究。
骨形態(tài)發(fā)生蛋白(Bonemorphogeneticprotein,BMP)是一組分泌性的多功能蛋白質,除BMP1外均屬于TGF-β(轉化生長因子-β)超家族成員,在體內可以通過旁分泌和自分泌的形式誘導骨的形成,是目前公認最強的骨誘導因子。BMP2是其中研究和應用最廣泛的成骨生長因子之一,它可以在體外誘導間充質干細胞向成骨細胞分化,體內誘導骨形成。BMP2在啟動和調節(jié)骨形成中起著關鍵的作用,因
4、此任何影響B(tài)MP2基因表達的因素都可能會影響骨形成。
若能闡明1,25(OH)2D3與BMP2基因表達的關系,對進一步理解1,25(OH)2D3在骨形成中的作用會有很大的幫助,目前文獻中尚未有此類報道。
遺傳性高鈣尿(Genetichypercalciuricstone-forming,GHS)大鼠是研究特發(fā)性高鈣尿(Idiopathichypercalciuria,IH)患者的理想動物模型,它們都表現(xiàn)為小腸
5、的鈣吸收增加,腎臟的尿鈣重吸收減少,骨密度減低。既往的研究表明GHS大鼠中腸鈣吸收的增加,尿鈣重吸收的減少與組織中VDR水平的增加有很大的關系。但是GHS大鼠中骨密度減低的原因仍不是十分清楚。本研究旨在通過探尋GHS大鼠中VDR與BMP2的關系來分析這種動物模型中骨密度減低的可能原因,并進一步探討1,25(OH)2D3對BMP2基因表達的調控及可能的機制,從而進一步分析1,25(OH)2D3在骨形成中的作用及機制。
目的:
6、
1、研究GHS大鼠和正常SD大鼠相同組織中維生素D受體蛋白和BMP2mRNA的基礎表達水平并進行比較,分析VDR和BMP2可能存在的聯(lián)系。
2、體外培養(yǎng)GHS大鼠和SD大鼠的骨髓基質干細胞,以及UMR-106細胞,研究1,25(OH)2D3對BMP2mRNA表達的影響。
3、研究1,25(OH)2D3調控BMP2基因轉錄表達的作用機制。
4、探討DNA甲基化和組蛋白修飾在1,25
7、(OH)2D3調控BMP2基因表達中的作用。
方法:
1、選取成年GHS大鼠和SD大鼠,斷頸處死,無菌條件下取出股骨和脛骨,抽取骨髓,應用紅細胞裂解法及直接貼壁法獲取并體外培養(yǎng)骨髓基質干細胞,無菌條件下取出腎臟及小腸,置入液氮中快速冷凍。應用蛋白質印跡(Westernblot)法檢測GHS和SD大鼠骨髓基質干細胞、腎臟和小腸中的維生素D受體蛋白的水平。應用實時定量聚合酶鏈反應(Quantitativereal
8、-timepolymerasechainreaction,qRT-PCR)法檢測GHS和SD大鼠骨髓基質干細胞、腎臟和小腸中的BMP2mRNA的表達。
2、分別應用1,25(OH)2D3處理體外培養(yǎng)的GHS大鼠和SD大鼠的骨髓基質干細胞和UMR-106細胞,應用qRT-PCR法檢測細胞中BMP2mRNA表達的變化。
3、應用軟件分析BMP2基因轉錄調控區(qū)內可能的VDR結合位點,根據(jù)分析結果的基因序列,利用引物
9、設計軟件PrimerPremier5.0輔助設計相應的擴增引物。
4、應用染色質免疫沉淀技術(ChromatinImmuno-Precipitation,ChIP)檢測VDR與BMP2轉錄調控區(qū)DNA的結合,應用方法3中獲得的擴增引物對ChIP產物進行PCR擴增,擴增產物進行凝膠電泳分析。
5、克隆方法4中獲得的BMP2轉錄調控區(qū)內VDR結合位點的基因片段,構建含此基因片段的熒光素酶基因表達載體,通過熒光素酶
10、報告基因檢測系統(tǒng)分析此片段的轉錄活性。
6、DNA甲基轉移酶抑制劑5-aza-2’-deoxycytidine(DAC)單獨或聯(lián)合1,25(OH)2D3處理體外培養(yǎng)的骨髓基質干細胞和UMR-106細胞,應用qRT-PCR檢測BMP2mRNA的表達變化。組蛋白去乙酰酶抑制劑trichostatinA(TSA)單獨或聯(lián)合1,25(OH)2D3處理細胞,應用qRT-PCR檢測BMP2mRNA的表達變化。
7、1,2
11、5(OH)2D3處理UMR-106細胞后提取基因組DNA,應用重亞硫酸鹽焦磷酸測序法(Bisulfitepyrosequencing)檢測BMP2基因轉錄調控區(qū)CpG位點的甲基化狀態(tài)的改變。
8、1,25(OH)2D3處理UMR-106細胞后,應用染色質免疫沉淀技術檢測BMP2轉錄調控區(qū)H3K9甲基化、組蛋白H3乙?;潭鹊母淖?。
結果:
1、GHS大鼠骨髓基質干細胞、腎臟和小腸中的維生素D受體
12、蛋白的水平較正常SD大鼠明顯增加,BMP2mRNA的表達較正常SD大鼠明顯降低。
2、以10-8mol/L的1,25(OH)2D3分別處理體外培養(yǎng)的SD大鼠和GHS大鼠骨髓基質干細胞6h、12h和24h,與空白對照組比較,BMP2mRNA的表達均明顯降低。以10-8mol/L的1,25(OH)2D3分別處理培養(yǎng)的UMR-106細胞1h、6h、12h、24h和48h,與空白對照組比較,BMP2mRNA的表達均明顯降低。以不同
13、濃度的1,25(OH)2D3分別處理體外培養(yǎng)的GHS大鼠和SD大鼠的骨髓基質干細胞和UMR-106細胞24h,與空白對照組比較,BMP2mRNA的表達均明顯降低。
3、軟件分析了包括BMP2基因及其側翼序列在內的共計28,545bp的一段基因序列,共獲得8個可能存在的VDR結合位點(RegionA-H)。
4、以VDR抗體進行ChIP實驗,將ChIP產物PCR擴增后,進行凝膠電泳分析顯示VDR能結合BMP2轉
14、錄調控區(qū)的RegionC片段。
5、成功構建了pGL3-RegionC-promoter熒光素酶報告基因質粒,將其轉染入UMR-106細胞,結果顯示構建的pGL3-RegionC-promoter熒光素酶報告基因與空白對照的PGL3-promoter相比,表達活性顯著降低。1,25(OH)2D3的處理,使報告基因的熒光素酶表達活性進一步顯著降低。
6、不同濃度(0.5,1,2umol/L)的DAC處理來源于G
15、HS大鼠的骨髓基質干細胞及UMR-106細胞后,均顯著上調BMP2mRNA的表達,僅有0.5umol/L的DAC上調來源于SD大鼠的骨髓基質干細胞中BMP2mRNA的表達。但是當與1,25(OH)2D3聯(lián)合使用時,與單獨1,25(OH)2D3處理組相比,較高濃度(1,2umol/L)的DAC均能顯著上調三種細胞中BMP2mRNA的表達。
7、不同濃度(20,100,500nmol/L)的TSA處理來源于SD大鼠的骨髓基質干
16、細胞后,顯著上調BMP2mRNA的表達,而僅有20nmol/L的TSA上調來源于GHS大鼠的骨髓基質干細胞中BMP2mRNA的表達。當與1,25(OH)2D3聯(lián)合使用處理來源于SD和GHS大鼠的骨髓基質于細胞,以及UMR-106細胞時,與單獨1,25(OH)2D3處理組相比,較高濃度(100,500nmol/L)的TSA均能顯著上調BMP2mRNA的表達。
8、1,25(OH)2D3處理后,重亞硫酸鹽測序顯示BMP2基因轉
17、錄調控區(qū)RegionC區(qū)域的一個CpG位點完全甲基化,而對照組同一CpG位點仍呈去甲基化狀態(tài)。
9、染色質免疫沉淀技術檢測顯示1,25(OH)2D3處理UMR-106細胞后,提高了BMP2轉錄調控區(qū)RegionC區(qū)域H3K9甲基化的程度,顯著降低了BMP2轉錄調控區(qū)RegionC區(qū)域組蛋白H3乙?;某潭?。
結論:
1、在GHS大鼠的相同組織中,與正常SD大鼠比較,VDR水平升高而BMP2mRN
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