YopJ的絲氨酸和賴氨酸雙乙?;钚约肮δ?pdf_第1頁
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文檔簡介

1、本研究通過模擬耶氏鼠疫桿菌感染過程揭示細(xì)菌性乙酰轉(zhuǎn)移酶YopJ對絲氨酸乙?;c賴氨酸乙?;募?xì)胞學(xué)效應(yīng)。應(yīng)用鳥槍蛋白組學(xué)方法和label-free定量技術(shù),我們比較了YopJ對細(xì)胞蛋白上的絲氨酸與賴氨酸殘基乙?;挠绊憽L貏e是我們鑒定出了膜相關(guān)泛素連接酶MARCH8上的絲氨酸與賴氨酸乙?;稽c并制備了針對MARCH8絲氨酸乙?;稽c的抗體,用免疫學(xué)方法證實了YopJ對March8絲氨酸和賴氨酸乙?;挠绊憽opJ催化區(qū)突變體的研究表明

2、YopJ誘導(dǎo)的絲氨酸和賴氨酸乙?;谴呋瘏^(qū)依賴的,催化區(qū)突變體不能有效誘導(dǎo)絲氨酸和賴氨酸乙?;?。我們的結(jié)果表明絲氨酸乙?;竃opJ可以靶向其蛋白底物雙乙?;嚢彼岷徒z氨酸殘基。
  研究目的:
  證實YopJ對絲氨酸和賴氨酸殘基雙乙酰化活性與功能
  研究方法:
  1、重組質(zhì)粒的構(gòu)建與在HeLa中的表達(dá):YopJ cDNA是全基因合成的,MARCH8 cDNA是通過RT-PCR方法從K562細(xì)胞中擴(kuò)增出來的

3、。MARCH8截斷體是1-156aa,全長是1-291aa。cDNAs被亞克隆到pcDNA3.0-flag載體中,它們的序列都經(jīng)過測序驗證。YopJ催化區(qū)突變體C172A是通過定點突變從YopJ重組質(zhì)粒中擴(kuò)增而來并經(jīng)過測序驗證。重組質(zhì)粒經(jīng)過Omega大抽質(zhì)粒盒子純化后用Lipofectamine轉(zhuǎn)染到HeLa細(xì)胞中,轉(zhuǎn)染24-48h后收集細(xì)胞提取蛋白。
  2、蛋白提取:收集細(xì)胞用PBS洗三遍后,用Millipore RIPA裂解

4、液裂解,通過超聲或冰上裂解法獲取蛋白。
  3、溶液內(nèi)酶解:在一個過濾膜(Microcon YM-30)上,加入50μg的蛋白樣品,200μ l含8M尿素的1M Tris-HCl中,離心,用50 mM的碳酸氫銨洗兩次,用含1μg胰酶的50 mM碳酸氫銨重懸,輕輕旋轉(zhuǎn)混勻,37℃酶解24h,用C18Ziptip脫鹽后,凍干貯存于-80℃?zhèn)溆谩?br>  4、免疫沉淀和膠內(nèi)酶解:轉(zhuǎn)染MARCH8和(或)YopJ的HeLa細(xì)胞,常規(guī)方法

5、制得細(xì)胞抽提物,用Flag抗體免疫沉淀帶Flag標(biāo)簽的MARCH8,用SDS-PAGE膠分離,手術(shù)刀片切下MARCH8條帶,標(biāo)準(zhǔn)方法進(jìn)行膠內(nèi)酶解24h,過zip-tip脫鹽后,LC-MS/MS分析。
  5、LC-MS/MS分析:取約2μg的肽段注射到C18柱中(200xφ0.075mm),用120 min的線性梯度(5-35%乙腈,0.1%的甲酸水)洗脫,然后用Orbitrap Elite質(zhì)譜儀檢測。數(shù)據(jù)的采集采用數(shù)據(jù)依賴模式,

6、所有掃描的一級質(zhì)譜中前20個最強(qiáng)的峰進(jìn)行二級質(zhì)譜測定。MS/MS二級質(zhì)譜用Mascot和Sequest搜索人蛋白數(shù)據(jù)庫(UniProtKB,88295 entries),分析軟件是Proteome Discoverer1.4(Thermo Scientific,San Jose,CA).MS/MS質(zhì)譜圖搜庫的容差是0.8 Da,10 ppm,動態(tài)修飾是賴氨酸、絲氨酸乙?;?,甲硫氨酸氧化。所有修飾位點的確認(rèn)需要經(jīng)過人工檢索圖譜確定。

7、>  6、Label-free定量:Label-free方法測量肽段的豐度是由Progenesis LC-MSsoftware(version4.1; Nonlinear Dynamics,UK)完成的。簡言之,質(zhì)譜獲得的Raw文件用ReAdw-program程序轉(zhuǎn)換成mzxml格式,并輸入到ProgenesisLC-MS軟件中。多個分析并行時,離子強(qiáng)度圖可用來診斷檢測的缺陷。最好的數(shù)據(jù)集被選作數(shù)據(jù)校準(zhǔn)的參照。排除電荷數(shù)為1或>4的肽段

8、。同時搜一個反庫(decoy database)來確定出錯率(FDR)。每個通過質(zhì)譜確定的有效肽段的定量定義為該位點的所有肽段豐度之和。統(tǒng)計學(xué)分析根據(jù)某一位點所有乙酰化肽段豐度之和與未修飾肽段之和的比值。溶液內(nèi)酶解的數(shù)據(jù),有時找不到對應(yīng)的非乙酰化肽段,就采用某一位點所有乙?;亩呜S度之和與一套α-actin的參考肽段豐度之和的比值.
  7、MARCH8 Sac71多克隆抗體的制備:化學(xué)合成March8乙?;亩蜸ac71,Ac-

9、T(Sac) ITPSSQDICRICHCEGDC-NH2及相應(yīng)的未修飾肽段 S71,Ac-TSITPSSQDICRICHCEGDC-NH2,并經(jīng)質(zhì)譜驗證純度在90%以上。乙酰化肽段與BSA偶聯(lián)后,免疫新西蘭大白兔三次,末次免疫10天后采血用ELISA法測抗體滴度,末次注射15天后采取所有的血樣收集抗血清??寡暹^兩次與未修飾肽段偶聯(lián)的色譜柱去除與未修飾肽段結(jié)合部分,再過一次與修飾肽段偶聯(lián)的色譜柱,收集與修飾肽段結(jié)合的成分??贵w的特異性

10、經(jīng)過Dot-blot和競爭實驗驗證。
  8、免疫沉淀-WB:帶Flag標(biāo)簽的MARCH8用Flag抗體進(jìn)行免疫沉淀,沉淀得到的蛋白用SDS-PAGE電泳分離,轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素膜上,用5% BSA封閉。一抗用anti-flag、泛賴氨酸乙?;贵w、MARCH8 Sac71抗體檢測。二抗是熒光標(biāo)記的IRDye800CW或IRDye680CW conjugated IgG,結(jié)果用LI-COR遠(yuǎn)紅外成像系統(tǒng)掃描。
  9、體外乙酰

11、化實驗(用YopJ重組細(xì)胞抽提物):轉(zhuǎn)染有MARCH8的HeLa細(xì)胞抽提物用Flag抗體進(jìn)行IP,將MARCH8固定在瓊脂糖珠子上,進(jìn)行體外乙?;磻?yīng)。第一份與空載對照pcDNA3.0-flag的細(xì)胞抽提物孵育,第二份與轉(zhuǎn)染YopJ的HeLa細(xì)胞抽提物孵育,第三份與轉(zhuǎn)染YopJ突變體C172A的HeLa細(xì)胞抽提物孵育。所有體系中都添加乙酰輔酶A,蛋白酶抑制劑,去乙?;敢种苿?,在37℃孵育1h,孵育結(jié)束后,洗滌,用western-blo

12、t分析結(jié)果。一抗為anti-flag、泛賴氨酸乙?;贵w(Pan-K)、MARCH8 Sac71抗體。
  研究結(jié)果:
  1、乙酰轉(zhuǎn)移酶YopJ介導(dǎo)了HeLa細(xì)胞蛋白絲氨酸和賴氨酸殘基的雙乙?;?用鳥槍蛋白組學(xué)和Label-free定量,我們證明YopJ的轉(zhuǎn)染可以引起細(xì)胞蛋白絲氨酸和賴氨酸乙?;奶岣撸渲邪?0個絲氨酸乙?;稽c(YopJ/non-YopJ1.3-fold,p=0.02)和8個賴氨酸乙?;稽c(YopJ

13、/non-YopJ3.5-fold,p=0.00003)。
  2、絲氨酸乙?;竃opJ可以雙乙?;疎3泛素連接酶MARCH8的絲氨酸和賴氨酸殘基:用免疫沉淀和LC-MS/MS證明,YopJ的轉(zhuǎn)染可以雙乙酰化MARCH8的S44,S71,S253位點以及K247,K252位點。label-free定量表明YopJ轉(zhuǎn)染的HeLa細(xì)胞中Sac253和Sac44分別提高了28±11(p=0.002)和31±8(p=0.002)倍,Ka

14、c252和Kac247分別提高了36±18(p=0.0003)和18±8(p=0.01)倍。
  3、體內(nèi)外免疫實驗均證明乙酰化酶YopJ可以雙乙?;疢ARCH8的絲氨酸和賴氨酸殘基:為證實YopJ對MARCH8的雙乙?;饔?,我們制備了MARCH8 Sac71特異性抗體,Dot-blot和競爭實驗均證明該抗體是針對Sac71的特異性抗體。IP-WB證實YopJ與MARCH8共轉(zhuǎn)HeLa細(xì)胞之后,MARCH8的絲氨酸和賴氨酸乙?;?/p>

15、水平都得到明顯提高,絲氨酸乙?;岣吡?.8倍(1.8±0.5,p=0.027,n=3),賴氨酸乙?;岣吡?.9倍(1.9±0.4,p=0.012,n=3),證明MARCH8中可以在體內(nèi)提高絲氨酸和賴氨酸乙?;?。與此一致的是,共轉(zhuǎn)YopJ的催化區(qū)突變體C172A與MARCH8,MARCH8的絲氨酸和賴氨酸乙酰化水平并未得到相應(yīng)的提高,說明YopJ的雙乙酰化作用是催化區(qū)依賴的。為進(jìn)一步證明YopJ是直接乙酰化了MARCH8的賴氨酸和

16、絲氨酸殘基,我們又進(jìn)行了體外試驗,首先我們用免疫沉淀得到的MARCH8與轉(zhuǎn)染YopJ的HeLa細(xì)胞抽提物及乙酰輔酶A于37℃共同孵育1h,然后用MARCH8 Sac71和Pan-K乙酰化抗體分別檢測MARCH8的絲氨酸和賴氨酸乙?;?,結(jié)果與空載對照相比,YopJ可以明顯提高M(jìn)ARCH8的絲氨酸和賴氨酸乙酰化水平而其突變體C172A的這種能力明顯降低。為進(jìn)一步排除YopJ細(xì)胞抽提物中其他因素的干擾,我們又用純化的YopJ進(jìn)行了體外乙酰

17、化實驗,結(jié)果與用YopJ細(xì)胞抽提物得到的結(jié)果相似,充分證明了YopJ對MARCH8絲氨酸和賴氨酸殘基的雙乙?;饔?。
  4、YopJ對MARCH8的雙乙?;岣吡薓ARCH8的自身泛素化水平且這種作用是催化區(qū)依賴的:為探討YopJ對MARCH8的雙乙?;募?xì)胞學(xué)或生物學(xué)功能,我們檢測了MARCH8的自身泛素化水平。結(jié)果表明,與YopJ共轉(zhuǎn)的MARCH8的體外自身泛素化水平比單轉(zhuǎn)MARCH8的明顯提高,YopJ突變體C172A提高

18、MARCH8自身泛素化水平的能力明顯降低,說明這一能力是催化區(qū)依賴的。
  研究結(jié)論:
  我們通過鳥槍蛋白組學(xué)和Label-free方法證明了絲氨酸乙?;竃opJ對細(xì)胞蛋白水平和靶蛋白MARCH8絲氨酸和賴氨酸殘基的雙乙?;?,并用免疫學(xué)方法用體內(nèi)外實驗證明了YopJ對MARCH8的雙乙?;崾窘z氨酸乙?;唾嚢彼嵋阴;g可能構(gòu)成網(wǎng)絡(luò)。特別是,YopJ的雙乙?;瘏⑴c了MARCH8的自身泛素化過程,提示了MARCH8雙乙

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