腸三葉因子在畢赤酵母中的表達、純化及腸三葉因子受體的初步研究.pdf

1、背景： 腸三葉因子(intestinaltrefoilfactor，：ITF)是由腸道杯狀細胞特異分泌的具有特殊空間結構的小分子多肽[1]，ITF不僅能促進細胞增殖和移行，還由于其空間結構中有和粘蛋白的寡聚糖或多糖側鏈結合的位點，使之形成穩(wěn)定的凝膠復合物，穩(wěn)定腸粘液層。此外，ITF具有蛋白酶水解抗性和酸堿穩(wěn)定性，可減輕多種致傷因子造成的消化道損害，這些特性決定了ITF在腸道的自我保護機制中占重要地位。目前對ITF的研究已很深入，

2、但有關ITF受體的研究相對滯后，ITF是否具有獨特的受體存在爭議，一些學者認為ITF沒有特異受體，它依賴表皮生長因子受體(EGFR)發(fā)揮生物學效應[2]；另一些學者則持不同觀點，他們發(fā)現了一類能和ITF特異結合的蛋白，將其稱之為ITF結合蛋白，并對蛋白的基本特性進行了初步分析[3]，但這些蛋白是否就是ITF受體還缺乏具有說服力的直接證據。 目的： 在成功獲取重組表達.ITF的基礎上，通過配體受體動力學研究和受體定位研究，

3、探索在腸上皮細胞上是否存在ITF特異受體，以及受體在細胞上的分布特點。 方法： 1.ITF在酵母中的表達和純化：將成功轉化的含ITF成熟肽序列的酵母X-33菌株進行Zeocin篩選，將陽性轉化子接種于YPD液體培養(yǎng)基中搖瓶表達，表達產物上清經硫酸銨分級沉淀、Ni-NTA親和層析、超濾離心三步純化以獲取重組表達的ITF。TricineSDS-PAGE及Westernbloting鑒定重組蛋白。 2.腸三葉因子受體放

4、射性配基結合實驗(Radioligandbindingassay，RLBA)：摸索ITF受體放射性配基結合分析的最佳反應溫度、時間、細胞濃度和非標記ITF的濃度。在此條件下在IEC-6細胞上進行ITF受體放射性配基結合實驗，得到親和常數(KD)及最大結合容量(Bmax)。在相同的條件下對HT-29、5E6L、HaCat細胞上ITF受體進行分析，比較不同細胞上：ITF受體的差異。通過大量：EGF、ITF及EGFR阻斷肽對ITF受體和EGF

5、受體競爭抑制，證實ITF特異受體的存在。 3.腸三葉因子受體在腸上皮細胞上的定位：將傳代培養(yǎng)的IEC-6細胞用0.5％的胰酶消化后，細胞濃度調為約2.5×105個/ml，加入放有8×8mm蓋玻片的24孔板于37℃，5％CO2培養(yǎng)箱孵育，待IEC-6腸上皮細胞貼壁，細胞爬片用PBS清洗3遍后與B-藻紅蛋白(B-PE)標記的ITF(BPE-ITF)在4℃下分別共同孵育0.5，1.0，2.0，4.0h，孵育結束后PBS清洗3遍×3mi

6、n，細胞片置于載玻片上并用90％緩沖甘油封片，激光共聚焦顯微鏡下觀察ITF受體在IEC-6細胞上的分布規(guī)律。并使用過量的EGF、ITF和EGFR阻斷肽進行競爭抑制實驗，觀察熒光的變化情況。 結果： 1.酵母表達獲得ITF，產物經TricineSDS-PAGE、Westernblot鑒定具有良好的抗原性和特異性，三步純化后重組蛋白的純度超過95％，表達量達到約50mg/L。 2.放射性配基結合實驗最佳反應條件為4℃

7、，孵育30min，細胞濃度為5.0×105個/ml，非特異結合配基濃度為標記配基的10000倍。在此條件下，對：IEC-6、HT-29、5E6L和HaCat細胞上ITF受體進行放射性結合分析，并通過Scatchard線性回歸分析得到IEC-6細胞最大結合容量Bmax=62.713×106結合位點/細胞，親和常數KD=4.3478×10-10mol/L；HT-29細胞最大結合容量Bmax=61.1583×106結合位點/細胞，親和常數KD

8、=0.8849×10-10mol/L；5E6L細胞最大結合容量Bmax=184.89×106結合位點/細胞，親和常數KD=3.448×10-10mol/L。根據所得到的KD值和Bmax分析，ITF與IEC-6、HT-29、5E6L細胞結合呈高親和力，但受體密度有所差異。表皮細胞HaCat與ITF結合呈低親和力。EGF對ITF受體及：ITF對EGF受體均無競爭抑制作用，EGFR阻斷肽對ITF與IEC-6細胞的結合并未受影響。 3.

9、激光共聚焦觀察發(fā)現，熒光標記的ITF首先聚集在細胞膜上，隨時間和濃度的增加，熒光標記的ITF逐漸向胞漿與胞核轉移。過量的ITF可明顯抑制熒光標記的ITF與細胞結合，熒光強度明顯降低。EGF和EGFR阻斷肽對，ITF在細胞膜上的熒光強度和向胞漿、胞核的轉移沒有影響。 結論： 1.重組表達的ITF產量約50mg/L，純度＞95％，符合受體研究中對配體的要求。 2.確定了放射性配基結合實驗最佳反應條件，并證明腸上皮細胞