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文檔簡介
1、目的:
研究低氧狀態(tài)HIF-1α基因干擾對NB4急性早幼粒細胞的增殖、侵潤和分化等生物學行為影響,探索HIF-1α對急性早幼粒白血病細胞分化的相關機制。
方法:
設計及合成HIF-1α特異性siRNA,構建HIF-1α siRNA重組慢病毒和陰性對照組慢病毒,通過感染篩選出最佳慢病毒載體。CoCl2模擬缺氧微環(huán)境,檢測不同濃度梯度對NB4細胞增殖的影響,選擇最利于NB4細胞生長的CoCl2濃度,作為模擬缺氧
2、微環(huán)境的終濃度。利用最佳慢病毒載體干擾NB4細胞中HIF-1α的表達,RT-PCR檢測HIF-1α的mRNA表達水平和Western blot檢測細胞內HIF-1α蛋白、VEGF蛋白、SDF-1蛋白的干擾效果,用新型四唑單鈉鹽試劑盒(CCK-8)檢測實驗組和對照組的細胞存活率,用AnnexinⅤ-PE細胞凋亡檢測試劑盒檢測HIF-1α干擾下實驗組和對照組細胞凋亡水平變化,使用流式細胞術檢測實驗組和對照組細胞CD11b的表達以分析NB4的
3、成熟分化程度,探索HIF-1α對急性早幼粒白血病細胞分化的相關機制。
結果:
1、模擬缺氧微環(huán)境, CoCl2終濃度在100μmol/L時,細胞增殖效率、HIF-1αRNA表達水平顯著性高于常氧條件培養(yǎng)NB4細胞(P<0.05),對NB4細胞影響作用最強。
2、MOI為25、50、75時,GFP表達率均值為50.6%、75.3%、98.2%,三組MOI存在顯著性差異(P<0.01),因此選擇MOI為75是較
4、合理的選擇。
3、流式細胞術檢測感染細胞上GFP表達強度,評估慢病毒干擾細胞株NB4轉染效率,與陰性慢病毒比較,慢病毒4對于NB4細胞的熒光感染效率最低(P<0.01),慢病毒1、慢病毒2、慢病毒3感染效率很高且彼此間無顯著性差異(P<0.05);RT-PCR檢測各組感染細胞中HIF-1αRNA表達情況,與陰性對照相比,慢病毒2感染NB4細胞HIF-1α表達率最低(P<0.01),慢病毒2載體干擾NB4細胞可作為實驗組。
5、> 4、與陰性對照組相比,實驗組細胞增殖率、HIF-1αmRNA抑制率均下降,有顯著性差異(P<0.01); HIF-1α蛋白、VEGF蛋白和SDF-1蛋白表達下降(P<0.05);實驗組細胞凋亡率、細胞侵襲、細胞分化、遷移有顯著性差異(P<0.01)。細胞形態(tài)學顯示,實驗組細胞的凋亡和死亡的細胞數(shù)量增加明顯(P<0.01)。
結論:
通過研究發(fā)現(xiàn)HIF-1α基因調節(jié)HIF-1α蛋白、VEGF蛋白和SDF-1蛋白來
6、實現(xiàn)細胞生物活性,對NB4的增殖起重要作用;RNA沉默HIF-1α基因,在缺氧狀態(tài),HIF-1α RNA基因表達下降,HIF-1α蛋白、VEGF蛋白和SDF-1蛋白均下調,實驗細胞的增殖能力受到明顯抑制,細胞凋亡率大大增加,成熟分化比例顯著增加。同時發(fā)現(xiàn)利用CD11b可作為評估早幼粒白血病細胞向成熟分化的檢測指標。本研究利用基因干擾技術,下調缺氧誘導信號通路中目的基因和相關蛋白質的表達,為治療急性早幼粒白血病拓展一種新的基因靶點,從基因
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