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文檔簡介
1、第一部分
目的:探討PARP-1 抑制劑3-aminobenzamide(3-AB)對骨肉瘤細胞U2OS 及MG63 增殖及凋亡的影響。
方法:
1.用含10%胎牛血清的McCoy's 5a Medium Modified 培養(yǎng)基培養(yǎng)U2OS細胞,含10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)基培養(yǎng)MG-63細胞,鋪滿瓶底后傳代;
2.將U2OS細胞種于96 孔板,設6組:空白組、對照組、5mM
2、 3-AB 刺激組、10 mM3-AB 刺激組、15mM 3-AB 刺激組、20mM 3-AB 刺激組,每組4個復孔,種3塊板,分別給予刺激24、48、72 h,按CCK-8 法檢測細胞增殖,計算抑制率;
3.將MG-63細胞種于96 孔板,設5組:空白組、對照組、5mM 3-AB 刺激組、10 mM3-AB 刺激組、20mM 3-AB 刺激組,每組4個復孔,種3 塊板,分別給予刺激24h、48h、72 h,按CCK-8
3、法檢測吸光度值,計算細胞增殖抑制率;
4.將U2OS細胞種于6 CM 培養(yǎng)皿中,接種6個皿,其中3 皿作為對照組給予完全培養(yǎng)基培養(yǎng),另3 皿在培養(yǎng)基中加入10mM的3-AB,分別在培養(yǎng)24h、48h、72h后每組各取一皿,按Annexin V-FITC 凋亡試劑盒說明書操作,上流式細胞儀測凋亡率;
5.將MG-63細胞種于6 CM 培養(yǎng)皿中,接種8個皿,其中2 皿作為對照組給予完全培養(yǎng)基培養(yǎng),另6 皿在培養(yǎng)基
4、中分別加入5mM、10mM、20mM的3-AB,在培養(yǎng)24h、48h后每組各取一皿,按Annexin V-FITC 凋亡試劑盒說明書操作,上流式細胞儀檢測細胞凋亡率;
6.將U2OS細胞種于6CM的培養(yǎng)皿中,接種4個皿,其中一皿作為對照組,另三皿分別給予10mM的3-AB 刺激8h、12h、24h后,按caspase-3 活性測定試劑盒說明書提取蛋白測定caspase-3的活性;
7.將U2OS細胞種于6CM
5、的培養(yǎng)皿中,接種4個皿,一皿作為對照,給予完全培養(yǎng)基培養(yǎng),另三皿培養(yǎng)基中加入10mM的3-AB,分別培養(yǎng)24h、48h、72h后提取細胞總蛋白,Western-blotting 檢測Bcl-2、Bax的表達。
結果:
1.3-AB 抑制骨肉瘤細胞U2OS的增殖,抑制率隨3-AB 濃度的升高而升高,隨時間的延長而升高;
2.3-AB 抑制骨肉瘤細胞MG-63的增殖,抑制率隨3-AB 濃度的升高而升
6、高,隨時間的延長而升高;
3.3-AB 促進骨肉瘤細胞U2OS的凋亡,凋亡率隨3-AB 刺激時間的延長而升高;
4.3-AB 促進骨肉瘤細胞MG-63的凋亡,凋亡率隨3-AB 濃度的升高而升高,隨時間的延長而升高;
5.3-AB 刺激8h、12h后caspase-3 活性增加,差異有顯著性,24h后caspase-3 活性與對照組比較無顯著性差異;
6.3-AB 刺激24h、48h
7、、72h后,Bax表達量逐漸升高,Bcl-2表達量則在24h 及48h輕度升高,72h 降低。
結論:PARP-1 抑制劑3-AB 能抑制骨肉瘤細胞的增殖,促進其凋亡。
第二部分
目的:探討PARP-1 抑制劑3-aminobenzamide(3-AB)對骨肉瘤細胞U2OS 遷移及侵襲的影響。
方法:
1.常規(guī)培養(yǎng)U2OS細胞,鋪滿瓶底后傳代;
2.將U
8、2OS細胞種于6 孔板中,待細胞鋪滿孔底后用槍頭在孔板底劃三道劃痕,PBS沖洗三次,然后將孔分為3組,分別給予完全培養(yǎng)基、含5mM 3-AB的培養(yǎng)基和含10mM 3-AB的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),24h后觀察細胞遷移的距離;
3.將U2OS細胞分為兩組,一組為對照組,給予完全培養(yǎng)基培養(yǎng),另一組給予10mM3-AB 處理24h,然后將細胞消化后重懸于含0.1% BSA的無血清培養(yǎng)基中,加入鋪好matrigel的Transwell 小
9、室的上室,下室加入完全培養(yǎng)基,24h后棉棒除去基質膠,染色,顯微鏡下觀察穿過膜的細胞數。
結果:
1.3-AB 刺激后較對照組細胞遷移距離降低,且隨3-AB 濃度增加,遷移距離降低越明顯,差異有顯著性;
2.3-AB 刺激后較對照組細胞穿過基底膜數量減少,差異有顯著性。
結論:
PARP-1 抑制劑3-AB 能抑制骨肉瘤細胞的遷移及侵襲能力。
第三部分<
10、br> 目的:探討PARP-1 抑制劑3-aminobenzamide(3-AB)聯合順鉑對骨肉瘤細胞U2OS 生長的影響。
方法:
1.常規(guī)培養(yǎng)U2OS細胞,鋪滿瓶底后傳代;
2.將U2OS細胞接種于兩塊96 孔板中,分為順鉑處理板及順鉑聯合3-AB 處理板,每板設七組,分別為空白組、對照組、0.5μg/ml 順鉑加或不加3-AB組、1.0μg/ml順鉑加或不加3-AB組、1.5μg/m
11、l 順鉑加或不加3-AB組、2.0μg/ml 順鉑加或不加3-AB組、2.5μg/ml 順鉑加或不加3-AB組,分別在刺激48h后用CCK-8 法測吸光度值,并計算細胞存活率;
3.將U2OS細胞接種于6CM 皿中,接種12個皿,分為4組:陰性對照組、3-AB 處理組、順鉑處理組、3-AB 聯合順鉑處理組,每組3 皿,分別在培養(yǎng)24h、48h、72h后收集細胞,PI 染色,上流式細胞儀檢測細胞凋亡及細胞周期的變化。
12、 結果:
1.單純順鉑處理及與3-AB 聯合處理后細胞的存活率均隨順鉑濃度的增高而逐漸降低,單純順鉑處理IC50 為1.15003,聯合刺激組的IC50 為0.65254,增敏比為1.76;
2.與對照組比較,經單純3-AB 處理,及3-AB與順鉑聯合處理后細胞的凋亡率均增加,而3-AB 聯合順鉑處理后細胞的凋亡率較單純3-AB 及單純順鉑處理的凋亡率高;
3.與對照組比較,3-AB 處理
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