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文檔簡介
1、目的:篩選合適的實(shí)驗(yàn)對象,研究IL-4調(diào)控樹突狀細(xì)胞特異性細(xì)胞間黏附分子3結(jié)合非整合素(dendritic cell-specific ICAM-3 grabbing nonintegrin,DC-SIGN)的表達(dá)對樹突狀細(xì)胞免疫學(xué)功能的影響,進(jìn)而探討DC-SIGN表達(dá)水平與結(jié)核病發(fā)生的關(guān)系。 方法:①密度梯度離心法獲得C57BL/6小鼠骨髓、脾臟和人外周血單個核細(xì)胞,貼壁法去除懸浮細(xì)胞,貼壁細(xì)胞中加入粒細(xì)胞-巨噬細(xì)胞集落刺激因
2、子(GM-CSF)和白細(xì)胞介素-4(IL-4)協(xié)同誘導(dǎo)其分化為樹突狀細(xì)胞。倒置顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài),流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞表面CD11c、DC-SIGN、CD80、CD83、CD86和MHC-Ⅱ(或HLA-DR)分子的表達(dá)。②用不同劑量的IL-4(5、10、50、100、200 ng/ml)調(diào)控人外周血來源的DCs表面DC-SIGN的表達(dá)水平,流式細(xì)胞儀檢測各組DCs表型。⑧根據(jù)加入IL-4劑量將人外周血來源的DCs分為IL-4(5 ng/m
3、l)組和IL-4(50 ng/ml)組,分別加入脂多糖(LPS)、結(jié)核桿菌H37Rv菌懸液共培養(yǎng)。應(yīng)用流式細(xì)胞儀檢測各組DCs表型(CD11c、DC-SIGN、CD83、CD86、HLA-DR),ELISA法檢測細(xì)胞培養(yǎng)液中IL-12、IL-10含量,混合淋巴細(xì)胞培養(yǎng)法檢測各組DCs刺激同種異體T淋巴細(xì)胞增殖的能力。 結(jié)果:①小鼠骨髓、脾臟及人外周血來源的DCs培養(yǎng)7天后具有DCs的典型形態(tài)學(xué)特征。②小鼠骨髓、脾臟來源的DCs培
4、養(yǎng)1天、3天、7天后,DC-SIGN表達(dá)水平均<2%。人外周血來源的DCs培養(yǎng)1天、3天、7天后DC-SIGN表達(dá)水平分別為:52.86%、87.70%、83.37%。③小鼠骨髓來源的DCs培養(yǎng)7天后細(xì)胞表面CD11c、CD80、CD86和MHC-Ⅱ表達(dá)水平分別為:5.42%、2.95%、29.19%、52.59%。小鼠脾臟來源的DCs培養(yǎng)7天后細(xì)胞表面CD11c、CD80、CD86和MHC-Ⅱ分子表達(dá)水平分別為:4.01%、1.19%
5、、16.16%、54.89%。人外周血來源的DCs培養(yǎng)7天后細(xì)胞表面CD11c、CD83、CD86和HLA-DR表達(dá)水平分別為:93.62%、90.06%、97.54%、99.65%。④當(dāng)加入IL-4的劑量由5 ng/ml增加到50 ng/ml時,DC-SIGN的表達(dá)水平顯著增加(P<0.05)。但當(dāng)IL-4的劑量由50 ng/ml增至200 ng/ml時,DC-SIGN的表達(dá)水平雖仍隨IL-4劑量增加而增加,但差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0
6、.05)。⑤表達(dá)不同水平DC-SIGN的DCs成熟度無顯著差異(P>0.05)。⑥表達(dá)不同水平DC-SIGN的DCs加入LPS、H37Rv誘導(dǎo)后,培養(yǎng)液中IL-12含量無顯著差異(P>0.05),加入LPS誘導(dǎo)后培養(yǎng)液中IL-10含量也無顯著差異(P>0.05),但DC-SIGNhigh-DCs加入H37Rv誘導(dǎo)后培養(yǎng)液中IL-10含量明顯高于DC-SIGNlow-DCs(P<0.05)。⑦表達(dá)不同水平DC-SIGN的DCs加入LPS誘
7、導(dǎo)后刺激同種異體T淋巴細(xì)胞增殖的能力差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。DC-SIGNhigh-DCs加入H37Rv誘導(dǎo)成熟后與表達(dá)不同水平DC-SIGN的DCs加入LPS誘導(dǎo)成熟后刺激同種異體T淋巴細(xì)胞增殖的能力相當(dāng)(P>0.05),但DC-SIGNlow-DCs加入H37Rv誘導(dǎo)后刺激同種異體T淋巴細(xì)胞增殖能力明顯低于其它3組(P<0.05)。 結(jié)論:①小鼠骨髓和脾臟來源的DCs體外培養(yǎng)后細(xì)胞表面DC-SIGN及共刺激分子表達(dá)
8、水平低,且細(xì)胞純度低,無法進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn),C57BL/6小鼠不適合用于建立研究DC-SIGN的動物模型。人外周血來源的DCs體外培養(yǎng)后細(xì)胞表面DC-SIGN及共刺激分子表達(dá)水平高,且細(xì)胞純度高,適合進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。②IL-4能調(diào)控DC-SIGN的表達(dá)水平,并呈劑量依賴性。③DC-SIGNhigh-DCs加入H37Rv誘導(dǎo)后分泌IL-10水平明顯高于DC-SIGNlow-DCs,但DC-SIGNlow-DCs加入H37Rv誘導(dǎo)后刺激T淋巴細(xì)胞
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