CRISPR-Cas9技術介導miR167前體序列編輯體系的建立.pdf

1、中國作為世界柑橘的重要生產(chǎn)國之一，栽培歷史悠久，品種資源豐富。柑桔的無核育種目前仍然以常規(guī)育種為主，基于雜交的傳統(tǒng)育種手段耗時長且難以滿足定向改良的需求，芽變、實生選種及誘變育種的成功率較低，產(chǎn)生的突變有一定的隨機性。近年來基因工程育種作為一種重要輔助手段在柑橘遺傳改良中得到應用，基因工程育種可以根據(jù)人們的意愿定向改造生物目標遺傳特性，創(chuàng)造出新的種質資源，但是轉基因技術引發(fā)了很多爭議，因有外源基因的插入問題，目前轉基因技術安全性受到公眾

2、的廣泛重視。CRISPR/Cas9技術作為一門新興的第三代基因編輯技術，可以實現(xiàn)在基因組水平上對目標基因定點修飾，并且有研究表明其產(chǎn)生的突變可以遺傳給下一代，近些年來 CRISPR/Cas9技術逐漸成為研究基因功能的一種新方法。microRNAs（miRNAs）是一類長度約為19-26 nt的內源性非編碼單鏈RNA分子，廣泛存在于動植物細胞中，植物microRNA主要通過直接剪切或抑制翻譯的方式對靶基因mRNA發(fā)揮轉錄后調控作用。先前的

3、研究表明，一些 miRNAs在不同物種之間都具有序列和功能上的保守性，它們主要參與調控植物器官的形態(tài)建成和生長發(fā)育、植物逆境脅迫反應、植物激素調節(jié)和信號轉導以及其他重要的生物過程。植物 miR167是一類保守的 miRNA，它的靶基因有轉錄因子ARF6和ARF8，主要參與調控植物花和果實發(fā)育相關的過程。
　　本研究初步探索了利用 CRISPR/Cas9介導的基因組定點編輯技術對柑橘和番茄 miR167a前體序列進行編輯，以期運用該

4、技術開展柑橘無核種質的創(chuàng)制，并對miR167a的功能進行研究。本研究主要取得的研究結果如下：
　　1、利用miRBase數(shù)據(jù)庫搜索并下載出番茄sly-miR167a以及柑橘csi-miR167a的成熟序列和前體序列，分別與NCBI中柑橘和番茄基因組數(shù)據(jù)庫進行BLAST比對，找到它們相應的基因組DNA序列。通過對柑橘csi-miR167a和番茄sly-miR167a成熟序列比對分析，發(fā)現(xiàn)兩者同源性很高，說明 miR167a在柑橘和番

5、茄中的成熟序列保守性較好。同時比對兩者的前體序列后發(fā)現(xiàn)存在一定的差異，說明miR167a在柑橘和番茄中的前體序列保守性較差。
　　2、針對柑橘csi-miR167a前體序列和番茄sly-miR167a前體序列，利用在線軟件分別設計 gRNA位點，分別是 csi-gRNA和 sly-gRNA，并且成功構建了重組pKSE401和pP1C.1C兩種類型的CRISPR/Cas9表達載體，通過農(nóng)桿菌介導的遺傳轉化體系，進行柑橘上胚軸莖段和番

6、茄子葉的遺傳轉化試驗。在番茄的遺傳轉化中，經(jīng)過抗性篩選和PCR檢測，鑒定到67株轉pKSE401載體的再生植株，經(jīng)過PCR產(chǎn)物測序分析，與野生型植株的基因序列進行對比，靶標位點區(qū)域未發(fā)現(xiàn)堿基差異。對于轉 pP1C.1C載體的番茄材料，得到含熒光標記的愈傷組織，測序結果顯示靶標位點區(qū)域仍然沒有發(fā)生基因編輯。進一步通過 gRNA靶點效率體外檢測試驗，發(fā)現(xiàn) gRNA靶標位點體外酶切效率不高，由此推測番茄的遺傳轉化材料中沒有發(fā)生基因編輯情況，原

7、因在于gRNA位點的設計有缺陷。
　　3、改進試驗后，我們使用在線軟件和體外檢測相結合的方式設計gRNA靶標位點，在線軟件對番茄sly-miR167a前體的同源序列設計多個gRNA靶標位點，再通過體外切割效率檢測，最終驗證得到體外切割成功的 gRNA——G1。構建pP1C.1C表達載體后，通過農(nóng)桿菌介導法轉化番茄，得到3個有熒光標記的突變體材料。測序分析結果表明，3個突變體材料在基因組靶標位點區(qū)域均出現(xiàn)不同類型的堿基突變，主要是堿