版權(quán)說明:本文檔由用戶提供并上傳,收益歸屬內(nèi)容提供方,若內(nèi)容存在侵權(quán),請進(jìn)行舉報(bào)或認(rèn)領(lǐng)
文檔簡介
1、大豆(Glycine max(L.) Merr.)是一種具有極大經(jīng)濟(jì)價(jià)值的豆科作物,也是人類食物中植物蛋白質(zhì)的主要來源。隨著全世界人口的持續(xù)增長,大豆的需求量也日益增加,開發(fā)用于大豆遺傳改良的新技術(shù)對于研究大豆基因功能、培育新品種等具有重要意義。近年來,CRISPR/Cas9系統(tǒng)已經(jīng)成功在多種重要作物中實(shí)現(xiàn)了基因編輯,但是在大豆中的應(yīng)用并不成熟。本研究中,我們成功構(gòu)建了大豆的CRISPR/Cas9定點(diǎn)敲除體系并檢測了該技術(shù)對內(nèi)源基因及外
2、源導(dǎo)入基因的編輯效率,隨后探索了CRISPR/Cas9在大豆中介導(dǎo)基因定點(diǎn)敲入及片段替換的可行性。本研究取得的主要研究結(jié)果如下:
1、以擬南芥的FEI1、FEI2和SHR基因的蛋白序列為基礎(chǔ)序列,在NCBI數(shù)據(jù)庫中與大豆的數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對,與之同源性最高的基因分別命名為GmFEI1、GmFEI2和GmSHR。本研究中成功克隆到了這三個(gè)基因,并用作基因編輯的靶基因。
2、本研究中描述了一種在大豆中快速、高特異性的檢測CR
3、ISPR/Cas9介導(dǎo)的基因組定點(diǎn)敲除效率的方法。為了簡化操作和提高轉(zhuǎn)化效率,我們將sgRNA和Cas9的表達(dá)盒組裝在同一個(gè)載體上,Cas9依據(jù)雙子葉植物密碼子偏好做了密碼子優(yōu)化。該CRISPR/Cas9載體構(gòu)造簡單,選中靶基因和相應(yīng)靶點(diǎn)后,只需要替換sgRNA的序列即可。載體上還帶有一個(gè)GFP選擇標(biāo)記,可以可視化地快速選擇出轉(zhuǎn)化的發(fā)狀根。
3、本研究中,我們設(shè)計(jì)了一個(gè)sgRNA靶向外源導(dǎo)入基因bar和六個(gè)sgRNA分別靶向兩
4、個(gè)大豆內(nèi)源基因GmFEI2、GmSHR的不同位點(diǎn),結(jié)合大豆發(fā)狀根轉(zhuǎn)化系統(tǒng)對大豆基因組進(jìn)行定點(diǎn)編輯,統(tǒng)計(jì)每一個(gè)靶點(diǎn)的突變效率。檢測的170個(gè)發(fā)狀根中有54%在靶點(diǎn)處發(fā)生了定點(diǎn)編輯,Indel頻率為0.6%~95.0%。其中利用PCR/RE實(shí)驗(yàn)檢測發(fā)現(xiàn)bar-SP1、GmFEI2-SP1、GmFEI2-SP2和GmSHR-SP3靶點(diǎn)的突變率分別為36.7%、60.0%、93.3%和35.7%,Indel頻率分別為1.3%~21.0%、0.6
5、%~18.8%、1.0%~95.0%和2.8%~28.7%。利用 T7EI實(shí)驗(yàn)檢測發(fā)現(xiàn)在 GmSHR-SP1和GmSHR-SP2靶點(diǎn)的突變率分別為50.0%和45.4%,Indel頻率分別為2.3%~21.3%和8.7%~30.0%。隨后測序均發(fā)現(xiàn)在靶點(diǎn)處有堿基的插入、缺失及錯(cuò)配突變。結(jié)果證明CRISPR/Cas9系統(tǒng)可以在大豆中實(shí)現(xiàn)對外源導(dǎo)入基因及內(nèi)源基因的定點(diǎn)敲除。
4、本研究還檢測了CRISPR/Cas9系統(tǒng)只使用一個(gè)定
6、制的sgRNA同時(shí)編輯兩個(gè)大豆內(nèi)源基因的潛力。本實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)的GmFEI2-SP3可以同時(shí)靶向GmFEI1和GmFEI2的第三個(gè)外顯子。利用PCR/RE實(shí)驗(yàn)檢測發(fā)現(xiàn)30個(gè)陽性發(fā)狀根中,有三個(gè)在GmFEI1和GmFEI2的靶位點(diǎn)處同時(shí)產(chǎn)生了突變,但是Indel的頻率并不相同,在GmFEI1靶點(diǎn)的Indel頻率分別是32.7%、20.3%和21.6%,而在GmFEI2靶點(diǎn)的Indel頻率分別是7.0%、5.4%和27.0%。未切開條帶亞克隆測序
溫馨提示
- 1. 本站所有資源如無特殊說明,都需要本地電腦安裝OFFICE2007和PDF閱讀器。圖紙軟件為CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.壓縮文件請下載最新的WinRAR軟件解壓。
- 2. 本站的文檔不包含任何第三方提供的附件圖紙等,如果需要附件,請聯(lián)系上傳者。文件的所有權(quán)益歸上傳用戶所有。
- 3. 本站RAR壓縮包中若帶圖紙,網(wǎng)頁內(nèi)容里面會有圖紙預(yù)覽,若沒有圖紙預(yù)覽就沒有圖紙。
- 4. 未經(jīng)權(quán)益所有人同意不得將文件中的內(nèi)容挪作商業(yè)或盈利用途。
- 5. 眾賞文庫僅提供信息存儲空間,僅對用戶上傳內(nèi)容的表現(xiàn)方式做保護(hù)處理,對用戶上傳分享的文檔內(nèi)容本身不做任何修改或編輯,并不能對任何下載內(nèi)容負(fù)責(zé)。
- 6. 下載文件中如有侵權(quán)或不適當(dāng)內(nèi)容,請與我們聯(lián)系,我們立即糾正。
- 7. 本站不保證下載資源的準(zhǔn)確性、安全性和完整性, 同時(shí)也不承擔(dān)用戶因使用這些下載資源對自己和他人造成任何形式的傷害或損失。
最新文檔
- CRISPR-Cas9介導(dǎo)的丹參基因組編輯與丹參酮合成路徑的研究.pdf
- CRISPR-Cas9介導(dǎo)MSTN基因敲除綿羊制備.pdf
- 多元質(zhì)粒工程技術(shù)及CRISPR-Cas9介導(dǎo)的基因組編輯技術(shù)的建立與應(yīng)用.pdf
- 病毒介導(dǎo)CRISPR-Cas9煙草基因編輯系統(tǒng)的研究.pdf
- CRISPR-Cas9定點(diǎn)編輯豬基因組及克隆豬DNA異常甲基化研究.pdf
- CRISPR-Cas9介導(dǎo)DGAT1基因在小鼠MSTN位點(diǎn)定點(diǎn)整合研究.pdf
- 利用CRISPR-Cas9系統(tǒng)構(gòu)建基因編輯猴及CRISPR-Cas9系統(tǒng)應(yīng)用優(yōu)化.pdf
- CRISPR-Cas9介導(dǎo)綠色熒光蛋白基因在牛NANOG位點(diǎn)定點(diǎn)整合的研究.pdf
- 基于CRISPR-Cas9系統(tǒng)的水稻重要基因定點(diǎn)編輯技術(shù)研究.pdf
- CRISPR-Cas9介導(dǎo)hFAD3基因在牛NCAPG-LCORL位點(diǎn)定點(diǎn)整合研究.pdf
- CRISPR-Cas9系統(tǒng)介導(dǎo)的七鰓鰻和斑馬魚基因組編輯方法的建立與優(yōu)化.pdf
- 布魯氏菌中CRISPr-Cas9基因編輯技術(shù)研究.pdf
- CRISPR-Cas9介導(dǎo)大鼠AMOT基因的特異性點(diǎn)突變作用.pdf
- CRISPR-Cas9基因編輯系統(tǒng)介導(dǎo)的多基因敲除灘羊的制備與評價(jià).pdf
- CRISPR-Cas9高效等位基因編輯系統(tǒng)的構(gòu)建及其在豬基因組編輯中的應(yīng)用研究.pdf
- 基于CRISPr-Cas9系統(tǒng)的谷氨酸棒狀桿菌基因組編輯技術(shù)的研究.pdf
- CRISPR-Cas9介導(dǎo)綠色熒光蛋白基因在牛KRT18位點(diǎn)定點(diǎn)整合的研究.pdf
- CRISPR-Cas9介導(dǎo)的家蠶抗核型多角體病毒素材創(chuàng)制研究.pdf
- CRISPR-Cas9系統(tǒng)介導(dǎo)的印記基因敲除小鼠制備的研究.pdf
- CRISPR-Cas9系統(tǒng)介導(dǎo)羊MSTN基因敲除和定點(diǎn)整合fat-1基因的研究.pdf
評論
0/150
提交評論