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文檔簡介
1、肝活素( hepassocin, HPS),又名肝細胞衍生纖維蛋白原相關蛋白1(Hepatocyte-derived Fibrinogen-Related Protein1)或類纖維蛋白原1(Fibrinogen-Like1,FGL1),是一種肝臟特異性的促有絲分裂因子,并在肝部分切除、四氯化碳(CCl4)、D-氨基半乳糖(D-galN)等誘導的肝損傷修復中起重要作用。我們前期的研究表明HPS以表皮生長因子受體(EGFR)依賴方式激活M
2、APK信號通路并介導促進正常肝細胞增殖作用,但有關是否存在HPS特異受體及其受體分子還知之甚少。本研究在實驗室前期通過CHO細胞表達系統(tǒng)制備重組HPS的基礎上,建立了重組人HPS體外生物學活性測定方法,證實獲得高活性的重組HPS。進而采用免疫熒光實驗和受體結合實驗證實肝源細胞存在HPS特異受體。采用蛋白質(zhì)組學技術我們發(fā)現(xiàn)ANXA2分子是HPS受體候選分子,進一步我們通過多種方法證實ANXA2分子參與HPS膜信號的傳遞,表明ANXA2分子
3、至少是 HPS受體成分之一。這些研究結果為研究HPS介導的信號途徑及其在嚴重肝病治療中的應用提供了基礎。
前期實驗室已成功構建了CHO-HPS表達細胞系,并獲得多批次HPS樣品,本研究驗證了重組HPS的理化性質(zhì)和純度,證實獲得高純度 HPS。進一步,我們通過優(yōu)化實驗條件,建立了基于EdU摻入的促肝細胞增殖及基于乳酸脫氫酶釋放的肝細胞保護兩種體外HPS生物活性檢測方法。實驗結果表明重組HPS以劑量依賴方式促進肝細胞增殖,抑制CC
4、l4誘導的乳酸脫氫酶釋放,表明我們獲得了高純度高活性的重組HPS,可用于HPS受體及其信號途徑和 HPS功能等研究。這兩種方法操作簡單、重復性好,較好地反映了HPS體內(nèi)通過促進肝細胞增殖、抑制肝細胞壞死救治急性肝損傷小鼠的活性,可用于重組HPS體外生物學活性的評價,為重組HPS質(zhì)量控制和研究HPS的功能奠定基礎。為證實細胞膜上是否存在HPS特異受體,我們首先采用FITC熒光標記HPS,并通過免疫熒光實驗觀察HPS是否能與肝細胞膜結合,結
5、果發(fā)現(xiàn)FITC標記的HPS可特異結合在L02肝細胞膜部位,提示L02細胞存在HPS特異結合受體。為驗證這一結果,我們采用經(jīng)典的碘標法標記HPS,體外生物活性檢測表明125I-標記的HPS保持了促進肝細胞增殖的活性,提示I-標記沒有破壞HPS的空間結構。受體結合實驗結果發(fā)現(xiàn)HPS與L02人肝細胞、HepG2人肝癌細胞及小鼠原代肝細胞的結合呈現(xiàn)典型的受體與配體的結合動力學方式,L02細胞的飽和濃度為1546.32ng/mL,HepG2細胞的
6、飽和濃度為2753.84ng/mL,小鼠肝實質(zhì)細胞的飽和濃度為2242.76ng/mL。L02細胞、HepG2細胞、小鼠原代肝細胞表面HPS受體數(shù)目分別為3.1×105sites/cell、1.8×105sites/cell和4.8×105sites/cell。小鼠原代肝實質(zhì)細胞受體數(shù)量較多,可能與該細胞體積比較大有關。Scatchard分析結果顯示,三種肝源細胞只存在一種HPS受體。HPS與L02細胞、HepG2細胞、小鼠原代肝細胞的
7、結合常數(shù)依次為6.71pmol/L、7.7nmol/L和2.17nmol/L。競爭實驗表明,高倍濃度非標的HPS能夠有效競爭125I-HPS與細胞的結合,符合受體配體間的競爭曲線。這些結果表明上述肝源細胞存在 HPS特異膜受體。檢測125I-HPS與非肝源細胞A549、Hela、EA926細胞的結合發(fā)現(xiàn),HPS與受體的結合具有肝特異性。用高濃度EGF、HGF不能競爭HPS與肝細胞的結合,說明HPS受體不同于EGF和HGF受體。進一步,我
8、們用配體與受體交聯(lián)實驗也證實HPS特異受體的存在。放射自顯影結果表明125I-HPS與受體形成的復合體大小約為110kD,已知HPS的單體去除 N端信號肽后分子量為34kD,二聚體是其發(fā)揮活性的構象,分子量大小為68kD,因此推測HPS受體的分子量約為42kD。
為確認HPS的受體分子,我們采用蛋白質(zhì)組技術鑒定了HPS刺激后細胞膜蛋白質(zhì)磷酸化的變化,結果發(fā)現(xiàn)HPS刺激L02細胞顯著誘導40kD左右的酪氨酸磷酸化蛋白帶,對這一條
9、帶進行質(zhì)譜鑒定,得到4個候選蛋白,通過對候選蛋白質(zhì)組織分布、細胞定位、功能分析等綜合判斷,我們推測ANXA2分子可能為HPS的受體。進一步,我們驗證了HPS可誘導ANXA2發(fā)生酪氨酸磷酸化,HPS可與ANXA2在細胞膜共定位并發(fā)生相互作用;采用RNA干涉下調(diào)ANXA2表達,顯著降低125I-HPS與L02細胞的結合;下調(diào)ANXA2表達抑制了HPS誘導的EGFR磷酸化和MAPK通路的活化,并抑制了HPS促進L02細胞增殖和降低CCl4誘導
10、肝細胞損傷的活性。這些實驗結果表明ANXA2是HPS信號通路的關鍵分子,參與了HPS與肝源細胞的結合過程,是HPS受體或者至少是HPS受體的組成部分。
我們還通過同源建模的方法建立了HPS的三維結構,通過對模型進行優(yōu)化,最終建立了一個高質(zhì)量的HPS三維結構模型。將此模型與ANXA2進行剛性對接,并結合構型進行多重優(yōu)化,獲得HPS與ANXA2最佳的結合構型。ANXA2與HPS相互作用的殘基為:PHE72、GLN69、MET11。
11、與之對應的HPS作用的殘基為:Glu59、Leu55、Lys65。
HPS受體的確認對闡明HPS信號通路、功能及在嚴重肝病治療中的作用等多個方面具有重要意義,同時,HPS受體也可能成為肝臟疾病的靶點,用于新藥的研發(fā)。雖然本實驗初步確認ANXA2參與HPS與細胞結合的過程,但ANXA2缺乏嚴格的肝組織特異性,不能從組織分布的角度解釋 HPS特異促進肝細胞增殖的作用機制,此外,我們前期的研究表明HPS刺激肝細胞增殖依賴于EGFR的
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