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文檔簡介
1、目的:
(1)驗證介導 CXCR4的慢病毒轉(zhuǎn)染骨髓間充質(zhì)干細胞(Bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)后 BMSCs表達 CXCR4增加;(2)檢測CXCR4+-BMSCs向基質(zhì)細胞衍生因子l(stromal cell-derived factor-1,SDF-1)的定向趨化能力;(3)構(gòu)建SDF-1/I型膠原/殼聚糖復合膜,檢測膜的表征、溶脹率、生物相容性、緩控釋放SDF-1;(4
2、)構(gòu)建山羊脛骨缺損模型,通過將SDF-1/I型膠原/殼聚糖復合膜復合于組織工程骨中,觀察結(jié)合CXCR4+-BMSCs及BMP-2促進大段骨缺損修復的效果,為最終治療大段骨缺損提供一種治療上的可能。
方法:
(1)全骨髓貼壁法分離培養(yǎng)山羊BMSCs,并通過成骨、成脂、成軟骨多方誘導,并進行相應(yīng)染色鑒定;從形態(tài)學角度觀察細胞形態(tài),活死細胞染色液染色傳三代細胞,DAPI液染色細胞核;將介導CXCR4的慢病毒載體轉(zhuǎn)染BMSC
3、s,并通過熒光及蛋白的表達來驗證轉(zhuǎn)染效果;(2)通過 Transwell實驗來驗證CXCR4+-BMSCs向 SDF-1趨化能力強于 BMSCs;(3)利用冷凍干燥法制備SDF-1/I型膠原/殼聚糖引導膜,通過掃描電鏡觀察其表征并檢測溶脹率;使用含有溶酶菌的PBS液模仿體內(nèi)酶降解生物膜,用ELISA試劑盒檢測不同時間點的SDF-1濃度;用MTS法檢測SDF-1引導膜對三組細胞增殖、分化的影響;(4)采用介入微循環(huán)系統(tǒng)構(gòu)建山羊脛骨大段骨缺
4、損模型,并利用此動物模型,給予灌注CXCR4+-BMSCs及BMP治療,觀察山羊一般情況并利用影像學觀測脛骨修復的變化。(5)數(shù)據(jù)表示為平均數(shù)±標準差,采用SPSS19.0軟件分析統(tǒng)計,組間兩比較采用Student-Newman-Keuls檢驗,各組間差異使用單因素方差分析,p<0.05為有統(tǒng)計學意義。
結(jié)果:
(1)BMSCs在活死細胞染色液染色后全部呈現(xiàn)良好活性,綠色熒光強,DAPI染色后的細胞核形態(tài)良好,未見明
5、顯凋亡,CXCR4基因轉(zhuǎn)染的傳三代BMSCs表達CXCR4水平較轉(zhuǎn)染前明顯升高;(2)Transwell實驗表明CXCR4+-BMSCs對SDF-l的趨化能力比BMSCs明顯升高(p<0.05);(3)成功制備SDF-1/I型膠原/殼聚糖復合膜,復合膜呈疏松多孔的海綿狀,溶脹率98%,平均孔徑分別為(131±12)um;復合膜在含溶菌酶的PBS中可緩慢而持久地釋放SDF-1;復合膜用于培養(yǎng)BMSCs,可以保持細胞增殖狀態(tài),電鏡及能譜掃描
6、下可觀察到增殖分裂的細胞;(4)成功構(gòu)建介入微循環(huán)系統(tǒng)修復山羊脛骨大段骨缺損模型,山羊行走、奔跑功能恢復良好,影像學可見上下骨痂相連緊密,組織工程骨大部分吸收。
結(jié)論:
(1)介導CXCR4的慢病毒載體能順利轉(zhuǎn)染通過全骨髓貼壁法分離培養(yǎng)的山羊BMSC,使其CXCR4過表達,并明顯提高CXCR4+-BMSCs向SDF-1趨化的能力;(2)SDF-1/I型膠原/殼聚糖復合膜可體外降解并緩慢釋放SDF-1,生物相容性良好;
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