2023年全國碩士研究生考試考研英語一試題真題(含答案詳解+作文范文)_第1頁
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文檔簡介

1、目的:
  在體外,成體干細胞(adult stem cells,ASCs)通過細胞因子、基因修飾、機械牽拉等方法,能夠被誘導(dǎo)分化為平滑肌細胞(smooth muscle cells,SMCs)。非直接接觸共培養(yǎng)是誘導(dǎo)分化途徑之一,更為簡單易行。然而,迄今為止關(guān)于ASCs是否能夠通過這種方式被誘導(dǎo)分化為SMCs尚無定論。骨髓間充質(zhì)干細胞(bone marrow mesenchymal stemcells,BMSCs)因體外易獲取、

2、無倫理學(xué)爭議以及免疫源性小等特點,被認(rèn)為是組織工程理想的種子細胞。因此,通過Transwell小室建立大鼠BMSCs和膀胱SMCs的非接觸共培養(yǎng)模型,鑒定非接觸共培養(yǎng)能否誘導(dǎo)BMSCs向SMCs分化,為體外干細胞分化提供新的誘導(dǎo)途徑,并為下一步的研究建立細胞模型。
  表觀轉(zhuǎn)錄調(diào)控的另一種機制是ATP依賴的染色質(zhì)重塑復(fù)合物。SWI/SNF染色質(zhì)重塑復(fù)合物通過ATP水解釋放能量,松解致密的染色質(zhì)結(jié)構(gòu),使TF更易接近并結(jié)合DNA。BR

3、G1/BRM(Brahma-related Gene 1/Brahma,BRG 1/BRM)是SWI/SNF染色質(zhì)重塑復(fù)合物的核心亞單位。有研究發(fā)現(xiàn),BRG1/BRM和SMCs標(biāo)志基因表達有關(guān),提示在BMSCs向SMCs分化過程中,BRG1/BRM可能參與其中。迄今為止,BRG1/BRM調(diào)控SMCs標(biāo)志基因轉(zhuǎn)錄的機制尚不明確。前期研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)組蛋白特定位點的乙?;龠MSMCs標(biāo)志基因的表達。因此,我們提出假設(shè):SWI/SNF染色質(zhì)重塑復(fù)

4、合物可能聯(lián)合組蛋白特定位點的乙酰化修飾,共同調(diào)控SMCs相關(guān)基因的表達。通過揭示BRG1/BRM在BMSCs向SMCs的分化中的作用,為表觀遺傳調(diào)控干細胞分化提供實驗依據(jù)。
  方法:
  1.非直接接觸共培養(yǎng)誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細胞向平滑肌細胞分化
  頸椎脫臼法處死3-4周齡雌性SD大鼠,無菌分離雙側(cè)的股骨和脛骨,通過貼壁培養(yǎng)方法獲得BMSCs;同時,逐層分離下腹部皮膚,膀胱頸處離斷后通過膠原酶消化法獲得SMCs。BM

5、SCs用含10% FBS(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)的DMEM-F12培養(yǎng)劑培養(yǎng),SMCs用含10% FBS的DMEM-HG培養(yǎng)劑培養(yǎng),P3-4細胞用于實驗研究。為了鑒定BMSCs的干性,我們用流式細胞技術(shù)(flow cytometry,F(xiàn)CM)鑒定BMSCs表面CD29、CD31、CD45、CD34的表達情況。為了鑒定SMCs,我們用激光共聚焦顯微鏡技術(shù)(confocal laser scanning micros

6、cope,CLSM)鑒定SMCs的α-SMC、Calponin和SM-MHC蛋白表達情況。為了建立BMSCs向SMCs非接觸共培養(yǎng)模型,我們將2×105 SMCs接種在Transwell小室(直徑小于3μm)的外室面,待其貼壁后將同等數(shù)量的BMSCs接種在小室的內(nèi)室面,懸在六孔板中,將BMSCs和SMCs培養(yǎng)基按照1∶1比例混合后培養(yǎng),不同時間點用細胞刮收集細胞。定量PCR(quantity reverse transcription-

7、polymerase chainreaction,q-PCR)技術(shù)和WB技術(shù)(western blot,WB)測定α-SMC、Calponin和SM-MHC在共培養(yǎng)的BMSCs的表達情況。
  2.組蛋白修飾在丁酸鈉促BMSCs向SMCs分化中的調(diào)控機制
  用定量PCR技術(shù)測定不同濃度NaB干預(yù)BMSCs48h后α-SMC、Calponin和SM-MHC的mRNA表達情況;CLSM技術(shù)測定上述基因的蛋白表達。為了建立NaB

8、聯(lián)合共培養(yǎng)促進BMSCs向SMCs分化的方法,我們先用不同濃度NaB干預(yù)BMSCs48h,然后再與SMCs在Transwell小室上共培養(yǎng),最后在不同的時間點用細胞刮收獲細胞。定量PCR方法測定α-SMC、Calponin和SM-MHC基因的表達情況,WB和CLSM測定上述基因的蛋白表達情況。
  3.SWI/SNF染色質(zhì)重塑復(fù)合物在BMSCs向SMCs分化中的調(diào)控機制
  我們首先通過英俊生物公司設(shè)計并合成靶向干擾BRG1

9、和BRM基因編碼區(qū)的小分子干擾RNA片段(small interfering RNA,siRNA)三條,按照Lipofectamine2000說明書操作步驟轉(zhuǎn)染BMSCs,定量PCR技術(shù)測定BRG1和BRM基因表達情況,最終篩選出最佳干擾片段。為了明確BRG1和BRM對BMSCs向SMCs分化的影響,我們用定量PCR和CLSM技術(shù),對比siBRG1和siBRM轉(zhuǎn)染共培養(yǎng)的BMSCs前后,α-SMC和SM-MHC基因的表達情況。為了闡明B

10、RM是否聯(lián)合組蛋白特定位點乙?;揎椆餐{(diào)控SMCs標(biāo)志基因的轉(zhuǎn)錄,我們首先用CLSM技術(shù)對比siBRM轉(zhuǎn)染前后共培養(yǎng)的BMSCs的H3K9ace、H3ace和H4ace蛋白表達的情況,同時用ChIP-qPCR技術(shù)對比H3K9ace、H3ace和H4ace在α-SMC和SM-MHC基因啟動子區(qū)的富集量變化。為了明確BRM聯(lián)合H3K9ace、H3ace和H4ace促進共培養(yǎng)的BMSCs向SMCs分化是否通過SRF轉(zhuǎn)錄因子實現(xiàn),我們用CLS

11、M技術(shù)和ChIP-qPCR技術(shù)對比siBRM干擾前后共培養(yǎng)的BMSCs的SRF在SMCs標(biāo)志基因啟動子區(qū)富集量的變化。
  結(jié)果:
  1.非直接接觸共培養(yǎng)誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細胞向平滑肌細胞分化
  鏡下,原代BMSCs呈梭形,散在針尖樣排列,貼壁生長,形成集落;原代SMCs呈多邊形,傳代后胞內(nèi)有較多空泡。FCM結(jié)果顯示BMSCs穩(wěn)定表達干細胞標(biāo)志CD29,不表達CD34、CD45和CD31。CLSM結(jié)果顯示SMCs高表

12、達α-SMA、Calponin和SM-MHC蛋白。定量PCR結(jié)果顯示共培養(yǎng)72h后,BMSCs的α-SMA、Calponin和SM-MHC基因表達水平明顯升高。提示體外非接觸共培養(yǎng)能夠有效誘導(dǎo)BMSCs向SMCs分化。
  2.組蛋白修飾在丁酸鈉促BMSCs向SMCs分化中的調(diào)控機制
  1、為了測定NaB對BMSCs增殖和向SMCs分化的影響,我們在BMSCs培養(yǎng)基中加入不同濃度NaB進行干預(yù),CCK8結(jié)果顯示1.0mmo

13、l/L NaB干預(yù)BMSCs48h后能夠?qū)ζ湓鲋钞a(chǎn)生明顯的抑制作用;定量PCR結(jié)果提示1.0mmol/L NaB干預(yù)48h后能夠顯著提高BMSCs的α-SMA、Calponin和SM-MHC基因的表達水平。提示NaB能夠誘導(dǎo)BMSCs向SMCs分化。
  2、為了建立NaB聯(lián)合共培養(yǎng)促進BMSCs向SMCs分化的方法,我們分別用不同濃度NaB干預(yù)BMSCs,然后與SMCs共培養(yǎng),在不同時間點收獲細胞。定量PCR和WB結(jié)果顯示1.0

14、mmol/L NaB顯著提高了共培養(yǎng)的BMSCs的α-SMA、Calponin和SM-MHC表達水平,另外NaB干預(yù)的共培養(yǎng),SMCs標(biāo)志基因在共培養(yǎng)的第二天可達高峰。CLSM結(jié)果證實1.0mmol/L NaB明顯提高了共培養(yǎng)后的BMSCs的SMCs相關(guān)蛋白的表達。這部分結(jié)果說明1.0mmol/L NaB聯(lián)合共培養(yǎng)能夠在共培養(yǎng)的第二天提高BMSCs向SMCs的分化效率。
  3.SWI/SNF染色質(zhì)重塑復(fù)合物在BMSCs向SMCs

15、分化中的調(diào)控機制
  1、為了測定BRG1/BRM對共培養(yǎng)的BMSCs向SMCs分化的影響,我們用定量PCR技術(shù)測定siBRG1和siBRM轉(zhuǎn)染共培養(yǎng)的BMSCs前后對α-SMA和SM-MHC基因的影響。結(jié)果顯示siBRM轉(zhuǎn)染后α-SMA和SM-MHC基因表達水平顯著下降;而siBRG1基因干擾對其表達沒有明顯影響。CLSM結(jié)果顯示BRM基因抑制后,共培養(yǎng)的BMSCs的α-SMA和SM-MHC蛋白表達明顯降低。說明在BMSCs向S

16、MCs分化過程中,BRM而不是BRG1促進SMCs標(biāo)志基因的表達。
  2、為了測定BRM促進SMCs標(biāo)志基因的表達是否通過SRF和Myocardin實現(xiàn),我們用CLSM對比BRM抑制前后共培養(yǎng)的BMSCs的SRF和Myocardin表達變化,結(jié)果顯示BRM抑制后SRF和Myocardin表達降低。為了測定SRF表達降低和SMCs標(biāo)志基因的關(guān)系,我們用ChIP-qPCR對比BRM干擾前后共培養(yǎng)的BMSCs的SMCs標(biāo)志基因啟動子區(qū)

17、SRF的富集量變化,結(jié)果顯示BRM抑制后SRF在α-SMA和SM-MHC基因的富集量顯著降低。說明BRM可能通過SRF促進SMCs標(biāo)志基因的轉(zhuǎn)錄。
  結(jié)論:
  通過非直接接觸共培養(yǎng)模型誘導(dǎo)BMSCs向SMCs分化。通過NaB提高了共培養(yǎng)的BMSCs向SMCs分化的效率,同時增強了分化后細胞的收縮功能。深入揭示了其中的分子調(diào)控機制:NaB可能通過降低HDAC2的表達及其在SMCs標(biāo)志基因啟動子區(qū)的富集,從而提高了H3K9a

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