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文檔簡介
1、第一部分原代星形膠質(zhì)細胞模型制作及鑒定 目的:通過新生鼠大腦制作原代星形膠質(zhì)細胞,并進行鑒定和星形膠質(zhì)細胞純度測定 方法:采用出生三天內(nèi)的SD大鼠大腦制成細胞懸濁液后,按1.5×107計數(shù)接種于已用0.01%多聚賴氨酸包被好的底面積為75cm2培養(yǎng)瓶中,放置于培養(yǎng)箱中(5%CO2,95%O2,37℃)培養(yǎng),采用含15%的胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng)7d,通過搖床和逐漸傳代純化星形膠質(zhì)細胞,觀察細胞的變化,通過免疫熒光染色鑒
2、定星形膠質(zhì)細胞。 結果:通過搖床與高血清培養(yǎng)可獲得高純度星形膠質(zhì)細胞,并隨逐漸傳代更加純化,形態(tài)也逐漸變化,培養(yǎng)的細胞GFAP染色呈陽性,顯示正常星形膠質(zhì)細胞胞體呈多角形,胞膜光滑,邊界清楚,突觸長且多相互連接,GFAP陽性細胞占總細胞數(shù)比例在95%以上。 結論:通過新生鼠大腦制作原代星形膠質(zhì)細胞,高血清培養(yǎng)基和搖床后培養(yǎng)可獲得高純度的星形膠質(zhì)細胞。 第二部分原代星形膠質(zhì)細胞缺營養(yǎng)損傷模型制作 目的:制作
3、理想的原代星形膠質(zhì)細胞的損傷模型,觀察形態(tài)變化 方法:采用出生三天內(nèi)的SD大鼠大腦制成細胞懸濁液后,采用含15%的胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng),通過搖床和逐漸傳代純化星形膠質(zhì)細胞。采用PBS緩沖液代替培養(yǎng)基模擬缺營養(yǎng)模型,缺營養(yǎng)3h后恢復營養(yǎng),觀察細胞缺營養(yǎng)前后形態(tài)變化。 結果:缺營養(yǎng)3h后部分細胞胞體變小,突觸變短,細胞間相互連接減少或消失,個別細胞呈圓形,復營養(yǎng)后大多數(shù)細胞胞體變大,突出變長并相互交錯,基本恢復缺營前
4、形態(tài),個別細胞死亡成圓形。 結論:高血清培養(yǎng)和搖床后可獲得高純度的星形膠質(zhì)細胞,原代星形膠質(zhì)細胞可耐受一定的缺營養(yǎng)損傷,恢復營養(yǎng)后可基本恢復至損傷前的形態(tài) 第三部分甲基強的松龍與促紅細胞生成素聯(lián)合應用對原代星形膠質(zhì)細胞作用的研究 目的:研究甲基強的松龍(MPSS)與促紅細胞生成素(EPO)單獨以及聯(lián)合應用對體外培養(yǎng)的原代星形膠質(zhì)細胞的作用。 方法:采用出生3d內(nèi)的SD大鼠大腦制成細胞懸濁液,采用含15%的
5、胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng),通過搖床和逐漸傳代純化星形膠質(zhì)細胞,按1.5×107計數(shù)接種于已用0.01%多聚賴氨酸包被好的底面積為75cm2培養(yǎng)瓶中,放置于培養(yǎng)箱中(5%CO2,95%O2,37℃)培養(yǎng),通過搖床和逐漸傳代純化星形膠質(zhì)細胞,實驗分為正常組、正常+MPSS組、正常+EPO組、正常+MPSS+EPO組、損傷組、損傷+MPSS組、損傷+EPO組、損傷+MPSS+EPO組。通過PBS緩沖液代替培養(yǎng)基模擬缺營養(yǎng)模型3小時后即刻分
6、別加入甲基強的松龍(10umol/l)、促紅細胞生成素(10u/l)、甲基強的松龍(10umol/l)與促紅細胞生成素(10u/l),然后分別繼續(xù)培養(yǎng)三天,免疫熒光技術鑒定星形膠質(zhì)細胞;MTT法檢測細胞的增殖活性和凋亡;PCR技術測定細胞GFAPRNA表達的變化。 結果:星形膠質(zhì)細胞搖床后傳至第三代,經(jīng)鑒定星形膠質(zhì)細胞純度達95%以上;缺營養(yǎng)3h后部分細胞胞體變小,突觸變短,細胞間相互連接減少或消失,個別細胞呈圓形,復營養(yǎng)后大多
7、數(shù)細胞胞體變大,突出變長并相互交錯,基本恢復缺營前形態(tài),個別細胞死亡成圓形;正常組和損傷組分別加入MPSS、EPO、MPSS和EPO三天后,損傷組細胞活性與GFAP表達均明顯升高,并且聯(lián)合應用MPSS與EPO與單獨應用MPSS、EPO相比,細胞活性與GFAP表達明顯升高,但是正常組沒有明顯變化。 結論:適當劑量的MPSS與EPO聯(lián)合應用對缺營養(yǎng)損傷的星形膠質(zhì)細胞有顯著的保護作用,并且與單獨應用MPSS、EPO相比有顯著性作用,而
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