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文檔簡介
1、本研究旨在:通過觀察超聲介導MBCA對體外培養(yǎng)的人臍靜脈內(nèi)皮細胞(HUVEC)的作用,靜脈注射USMBCA對大鼠心肌組織毛細血管及肌纖維的作用,以及使用超聲介導MBCA對綠色熒光蛋白報告基因(EPGFP)對HUVEC的轉染效率的影響,探討USMBCA是否可以作為基因治療的一種安全、有效的載體及其機理,應用超聲介導MBCA對HUVEC作用各種相關的適宜參數(shù)。 材料與方法:1.培養(yǎng)細胞。配制MBCA-聲諾維(SonoVue)。
2、 2.應用MTT比色實驗測定不同濃度MBCA對HUVEC活性的影響本實驗分組如下:根據(jù)添加MBCA的濃度不同,分為A組:MBCASonoVue濃度為50mg/ml,每孔加50μl;B組:MBCASonoVue濃度為25mg/ml;每孔加50μl;C組:MBCASonoVue濃度為17mg/ml,每孔加50μl;D組:MBCASonoVue濃度為12.5mg/ml,每孔加50μl;E組:對照組,每孔加生理鹽水50μl;F組:空白對照組,
3、不加細胞及MBCA,每孔加入200μl培養(yǎng)液。以上六組每組重復8孔。0.25%胰酶消化HUVEC單層培養(yǎng)細胞,用含10%FBS的1640培養(yǎng)液配成細胞懸液,以每孔含104個細胞接種于96孔培養(yǎng)板中,每孔體積150μl。如上所述,每組加入不同濃度的MBCA。進行超聲輻照后,培養(yǎng)細胞20小時,然后每孔加入MTT溶液10μl,37℃繼續(xù)孵育4小時,終止培養(yǎng),小心吸棄孔內(nèi)培養(yǎng)上清液。每空加入二甲基亞楓(DMSO)150μl,振蕩10分鐘。選49
4、0nm波長,在酶聯(lián)免疫檢測儀上測定各孔光吸收值,記錄結果。整個實驗重復三次。MTT測細胞活性,加入0.9%Nacl組的細胞存活率為100%,每組各孔細胞的存活率為:每組各孔細胞的吸光值與加入0.9%Nacl組各孔細胞的吸光值的比值的百分比。 3.不同濃度MBCA對HUVEC凋亡及活性的影響用含10%FBS的1640培養(yǎng)液配成HUVEC懸液,計數(shù)細胞數(shù)將濃度調(diào)至1×106/ml,將1ml細胞懸液接種到直徑35mm單孔聚乙烯培養(yǎng)皿中
5、。根據(jù)添加MBCA的濃度不同,分為A組:MBCASonoVue濃度為50mg/ml;B組:MBCASonoVue濃度為25mg/ml;C組:MBCASonoVue濃度約17mg/ml;D組:MBCASonoVue濃度為12.5mg/ml。以上四組每孔加MBCASonoVue300μl。E組:對照組,每孔加生理鹽水300μl。以上五組每組重復6孔。超聲輻照后繼續(xù)培養(yǎng)細胞24小時。按照Annexin-v-FITC和PI雙標記細胞凋亡檢測試劑
6、盒說明操作,然后用熒光顯微鏡(FMS)觀察加入不同濃度MBCA,HUVEC凋亡和壞死細胞的情況,F(xiàn)MS下綠色細胞為早期凋亡細胞,紅色細胞為晚期凋亡和死亡細胞,用流式細胞儀(FCM)檢測每組細胞凋亡及存活率。 4.超聲介導MBCA對HUVEC細胞膜的作用實驗分組:A組:正常對照組;B組:單純超聲輻照組;C組:MBCA組,以上各組均為一皿;D組:MBCA+超聲輻照組,兩皿。用含10%FBS的1640培養(yǎng)液配成HUVEC懸液,計細胞數(shù)
7、將濃度調(diào)至1×106/ml,將1ml細胞懸液接種到直徑35mm單孔聚乙烯培養(yǎng)皿中。C組、D組各加濃度為17mg/ml的MBCASonoVue,每孔加300μl。B組、D組用超聲輻照,輻照后立即各組取一皿細胞送電鏡室進行掃描電鏡(SEMS)觀察。D組的另一皿細胞繼續(xù)培養(yǎng)24小時后進行SEMS觀察。 5.動物實驗實驗動物分組:將16只大鼠隨機分為4組,每組4只,A組:正常對照組;B組:超聲輻照組,C組:MBCA組;D組:MBCA+超
8、聲輻照組。用10%水合氯醛(1~2ml/kg)對大鼠行腹腔麻醉,之后胸部脫毛。C組、D組大鼠經(jīng)股靜脈輸入含氟碳氣體MBCA(0.5ml/每只),注射時間約1分鐘,然后使用HP5500超聲診斷儀,S4探頭在B組、D組大鼠胸壁超聲輻照6分鐘,破壞心肌組織內(nèi)的MBCA。超聲輻照時采用contrast程序,間歇harmonic成像,探頭發(fā)射頻率為1.8MHz接收頻率為3.6MHz,機械指數(shù)1.6,聚焦深度4cm,采用心電觸發(fā),每7個心動周期觸發(fā)
9、一次。其余設置取該程序默認值,保持儀器各項設置在整個實驗過程中不變。透射電鏡(TEMS)觀察:超聲輻照后。立即剪斷大鼠肋骨,取左心室前壁心肌,送電鏡室做TEMS觀察。 6.基因轉染實驗實驗分組:本實驗分組如下:A組:HUVEC;B組:HUVEC+EPGFP+Lipofectamine2000;C組:HUVEC+EPGFP+Lipofectamine2000+SonoVue微泡;D組:HUVEC+EPGFP+Lipofectami
10、ne2000+超聲輻照;E組:HUVEC+EPGFP+Lipofectamine2000+SonoVue微泡+超聲輻照。每組實驗重復5次。用不同條件的超聲輻照。輻照后立即將上述細胞繼續(xù)培養(yǎng)24小時,之后用FMS觀察EPGFP在HUVEC內(nèi)的表達,并且使用FCM測出EPGFP在HUVEC內(nèi)的轉染率。 結果:1.應用MTT比色實驗,不同濃度MBCA對HUVEC活性的影響不同。超聲介導初MBCA及其稀釋2倍時細胞存活率較低;初MBCA
11、稀釋3倍時細胞存活率增高,且較前兩者有明顯差異(P<0.01),初MBCA稀釋4倍與稀釋3倍時比較,對細胞存活率無顯著影響(P>0.05)。 2.應用Annexin-v-FITC和PI雙標記細胞凋亡檢測試劑盒,檢測不同濃度MBCA對HUVEC活性、凋亡及壞死的影響不同。超聲介導初MBCA時存活細胞百分比較小,晚期凋亡和壞死細胞百分比較多;初MBCA稀釋2倍時存活細胞百分比增多,晚期凋亡和壞死細胞百分比減少,較前者有明顯差異(P<
12、0.01);初MBCA稀釋3倍時存活細胞百分比進一步增大,晚期凋亡和壞死細胞百分比進一步變小,且與初MBCA或其稀釋二倍時有明顯差異(P<0.01);初MBCA稀釋4倍與稀釋3倍時比較對細胞存活、晚期凋亡和壞死百分比無顯著影響(P>0.05)。超聲介導初MBCA稀釋3倍時,早期凋亡細胞百分比明顯減小,且與初MBCA或其稀釋二倍時有明顯差異(P<0.01),初MBCA稀釋4倍時與初MBCA稀釋3倍時比較對早期凋亡細胞百分比無顯著影響(P>
13、0.05)。 3.超聲介導MBCA可使大約23%HUVEC的細胞膜呈現(xiàn)直徑約2微米的小孔,該細胞繼續(xù)培養(yǎng)24小時后再進行SEMS觀察小孔關閉,細胞膜恢復正常。 4.TEMS觀察,超聲介導MBCA組,大鼠心肌組織毛細血管內(nèi)皮細胞膜破損、溶解,內(nèi)皮細胞線粒體空泡變性,細胞核內(nèi)異染色質(zhì)凝聚;血管壁破裂,可見紅細胞外溢;心肌纖維斷裂、溶解。 5.EPGFP對HUVEC轉染24小時后,F(xiàn)MS下實驗組的HUVEC內(nèi)可見特異性
14、EPGFP表達,超聲+微泡組EPGFP表達量明顯增多。流式細胞儀分析結果顯示,超聲破壞MBCA能明顯提高脂質(zhì)體介導的EPGFP對HUVEC的轉染率。 結論:1.超聲破壞MBCA能明顯提高脂質(zhì)體介導的EPGFP對HUVEC的轉染率。USMBCA可作為基因治療的載體。 2.SonoVue可增強超聲的空化效應,使HUVEC膜上出現(xiàn)可逆性小孔,導致細胞膜通透性增強。空化效應是超聲介導MBCA增強基因轉染率主要機制之一。
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