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文檔簡介
1、目的:CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細胞通過負(fù)性調(diào)節(jié)免疫反應(yīng)在維持免疫系統(tǒng)的平衡中發(fā)揮重要作用,因此該類細胞在移植、自身免疫和腫瘤等方面都有潛在的應(yīng)用價值,雖然在各個領(lǐng)域中研究和應(yīng)用的目的不同。就移植免疫而言,使用盡可能少甚至不用免疫抑制劑達到對主要和次要組織相容性復(fù)合體不同異體組織或器官的長期耐受一直都是被追求的理想目標(biāo)。天然存在的調(diào)節(jié)性T細胞數(shù)量稀少僅占CD4+細胞的5-10%,使其成為治療應(yīng)用的主要障礙,為了克服這一困難,人們研究了通
2、過體外擴增天然調(diào)節(jié)性T細胞來增加數(shù)量,但其不足在于來源匱乏和耗時較長。而CD4+CD25-T細胞在外周單個核細胞所占比重較高,在腫瘤相關(guān)的研究中表明腫瘤來源的可溶性因子可以將CD4+CD25-T細胞轉(zhuǎn)化為調(diào)節(jié)性T細胞。提示我們這有可能是一條獲得治療水平的應(yīng)用于同種移植中調(diào)節(jié)性T細胞的一條新途徑,目前尚無相關(guān)報道。本文即利用小鼠腎癌細胞系Renca細胞的條件培養(yǎng)基通過體外和體內(nèi)實驗對此做了探討。
方法:
⑴Re
3、nca細胞株購自中山大學(xué)醫(yī)學(xué)院動物實驗中心,BALB/c小鼠和C57BL/6(B6)小鼠,由中山大學(xué)眼科醫(yī)院實驗動物中心提供。所用各品系小鼠均為雄性,體重20±2g。
⑵在10%FBS+RPMI1640的培養(yǎng)基中傳代培養(yǎng)小鼠腎癌細胞株Renca,待細胞生長至80%時,換用無血清RPMI1640的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)72h,收集上清夜,1500rpm離心5 min,取上清超濾除菌,保存于-70℃冰箱中備用。
⑶斷頸處
4、死BALB/c小鼠,取脾臟,F(xiàn)icoll分離獲得單個核細胞;通過小鼠CD4+T細胞磁珠分離試劑盒,陰性選擇獲得CD4+T細胞;再次陽性選擇獲得CD4+CD25+T細胞和CD4+CD25-T細胞,通過流式細胞儀(BD FACS Calibur)分析細胞純度。其中后者作為細胞轉(zhuǎn)化培養(yǎng)用;前者用作陽性對照細胞。
⑷Foxp3 mRNA Real Time RT-PCR檢測培養(yǎng)終點收集細胞加入1ml Trizol試劑。勻漿后,用氯
5、仿進行二相分離,溶解至水相的RNA用異丙醇沉淀,離心后清洗RNA沉淀。標(biāo)本RNA反轉(zhuǎn)錄,合成cDNA。標(biāo)本的目的基因和管家基因分別進行Real time RT-PCR反應(yīng)。反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性10 s,F(xiàn)oxp3為40個PCR循環(huán)(95℃20 s,60℃20 s,72℃20 s),GAPDH為40個PCR循環(huán)(95℃20 s,60℃20 s,72℃20 s)。熒光定量結(jié)果以Foxp3/GAPDH的CT比值表示。
⑸細胞因
6、子等效性實驗根據(jù)初始條件培養(yǎng)基中所含IL-10和TGF-β濃度,換算出轉(zhuǎn)化培養(yǎng)細胞時各組相應(yīng)的終濃度,分別加入重組的小鼠IL-10和TGF-β,使孔內(nèi)這兩個細胞因子的終濃度與轉(zhuǎn)化培養(yǎng)時相同,加入與方法4同等量的抗小鼠CD28、IL-2,混勻后放入37.0℃、5%CO2、95%濕度條件培養(yǎng)箱中培養(yǎng);在培養(yǎng)的第4、第6d半量換液,換除培養(yǎng)基以1200rpm離心5min,加入含同樣濃度細胞因子,加入各孔混勻繼續(xù)培養(yǎng),第7天收集細胞。同1.4方
7、法檢測細胞表型。
⑹以Balb/c小鼠脾細胞作為反應(yīng)細胞,以C57BL/6小鼠脾細胞作為刺激細胞。經(jīng)25μg/ml的絲裂霉素滅活刺激細胞。反應(yīng)和刺激細胞均調(diào)整濃度為1×106/ml。刺激細胞與反應(yīng)細胞按1∶1比例進行混合淋巴細胞培養(yǎng)。在培養(yǎng)體系中加入經(jīng)轉(zhuǎn)化培養(yǎng)后再次分選的CD4+CD25+FoxP3+T細胞,與反應(yīng)細胞的比例分別為4∶1,0∶1,1∶1和1∶4,混勻后在培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72h,加入CCK-8后繼續(xù)培養(yǎng)6-8h后
8、,酶標(biāo)分析儀檢測在450nm波長的吸光度。
⑺組織病理學(xué)檢查和免疫組織化學(xué)染色于術(shù)后第10 d取皮膚移植物及周圍組織,用10%甲醛固定后行石蠟包埋、切片及HE染色,在光學(xué)顯微鏡下觀察各組標(biāo)本的組織病理學(xué)改變。將石蠟包埋的移植物組織切成5μm厚的切片,脫蠟至水,經(jīng)消除內(nèi)源性過氧化物酶及抗原復(fù)性處理后,進行免疫組化染色。染色參照免疫組化二步法試劑盒說明書操作,蘇木素復(fù)染后封片。顯微鏡400倍率下,在每張切片中隨機選擇5個視野計
9、數(shù)Foxp3陽性細胞,換算為陽性細胞數(shù)/mm2進行評價。
⑻使用SPSS11.0軟件進行統(tǒng)計分析。所有實驗數(shù)據(jù)均以X±s表示,組間差異的多重比較采用One-way ANOVA檢驗。移植皮瓣生存時間采用采用Kaplan-Meier生存曲線分析并用秩和檢驗(1og-rank test)檢驗。檢驗水準(zhǔn)a=0.05,即p<0.05為差異具有顯著性。
結(jié)果:
①取BALB/c小鼠的脾細胞,采用MACS方法
10、分選CD4+CD25-T細胞,分選后經(jīng)流式細胞儀鑒定其純度>88%。CD4+CD25-T細胞培養(yǎng)5 d后上機檢測。結(jié)果發(fā)現(xiàn)在一定比例范圍(3∶1)內(nèi)隨著R-CM的比例增加,CD4+CD25+Foxp3+T細胞在培養(yǎng)體系中所占的比例也相應(yīng)增加,在含75%的R-CM中達到最高,CD4+CD25+T細胞和CD4+Foxp3+T細胞分別為(21.52±1.88)%和(11.85±0.82)%,然而在完全R-CM中培養(yǎng)體系中CD4+CD25+和C
11、D4+Foxp3+T細胞的比例又呈下降趨勢它們分別是(16.47±1.56)%和(5.52±0.35)%,但仍高于無R-CM的培養(yǎng)體系中的比例(P<0.05)。
②培養(yǎng)的淋巴細胞Foxp3基因的表達隨著條件培養(yǎng)基在混合培養(yǎng)基中的比例增加,F(xiàn)oxP3的表達水平逐漸增加,而在含有75%的Renca條件培養(yǎng)基中培養(yǎng)的CD4+CD25-T細胞該基因表達水平最高,與對照培養(yǎng)基中培養(yǎng)的細胞相比有明顯差別(p<0.05),隨后在完全Re
12、nca條件培養(yǎng)基中細胞該基因的表達又呈較低水平。
③培養(yǎng)基中相同濃度的重組IL-10和TGF-β誘導(dǎo)轉(zhuǎn)化的調(diào)節(jié)性T細胞百分比低于對應(yīng)的條件培養(yǎng)基組結(jié)果顯示在對應(yīng)的含有相同濃度的重組IL-10和TGF-β各培養(yǎng)組CD4+CD25-T細胞轉(zhuǎn)化為CD4+CD25+T細胞和CD4+FoxP3+T細胞的百分率分別是(4.24±0.20)%、(5.28±0.57)%、(6.88±0.41)%和(9.07±0.40)%及(1.83±0.
13、06)%、(2.02±0.70)%、(2.04±0.78)%和(4.21±1.12)%,明顯低于對應(yīng)于RPMI1640:Renca條件培養(yǎng)基分別為3∶1、1∶1、1∶3和0∶1的各培養(yǎng)組的各組結(jié)果(p<0.05)。
④將被轉(zhuǎn)化的調(diào)節(jié)T細胞按不同比例加入單向混合淋巴細胞培養(yǎng)體系。結(jié)果顯示:隨著參與共培養(yǎng)的轉(zhuǎn)化性調(diào)節(jié)性T細胞的比例增加(0∶1、4∶1、1∶1和1∶4),各組細胞的吸光度逐漸降低,在0∶1組為0.71±0.036
14、,在1∶4組則為0.2±0.049,表明該細胞能降低反應(yīng)性T細胞的增殖能力,并且呈比例依賴性,各組相比P<0.05。
⑤從每組小鼠中各取8只用于記錄生存時間并繪制生存曲線,結(jié)果顯示:無論是在轉(zhuǎn)化的調(diào)節(jié)性T細胞處理組(29.6±1.4 d)還是新鮮分離的調(diào)節(jié)性T細胞處理組(28.0±1.0 d),其受體小鼠的皮膚移植物的存活時間均明顯長于未處理組(9.8±0.6 d)和PBS處理組(10.9±0.6 d)(P<0.05),甚
15、至長于雷帕霉素組(19.9±0.6 d)(P<0.05),而轉(zhuǎn)化的調(diào)節(jié)性T細胞處理組和新鮮分離的調(diào)節(jié)性T細胞處理組在移植物存活時間方面無明顯差異(P>0.05),在同系同基因移植組,移植皮片均永久存活。
⑥在皮膚移植后第15 d對受體兩足掌腫脹度測量的結(jié)果顯示:轉(zhuǎn)化的調(diào)節(jié)性T細胞處理組的小鼠對供體C57BL/6脾細胞反應(yīng)(0.29±0.071 mm)與未處理組(1.04±0.075 mm)和PBS處理組(1.00±0.12
16、2 mm)相比明顯較輕微(P<0.05),與天然的調(diào)節(jié)性T細胞處理組(0.29±0.035 mm)相似,而雷帕霉素處理組受體足掌的腫脹度介于兩者之間(0.42±0.1 mm)。
⑦在術(shù)后第10 d取受體移植皮片及其周圍組織進行病理組織學(xué)觀察。鏡下可見在未處理組和PBS處理組移植物表皮層壞死,真皮層結(jié)構(gòu)紊亂,前者彌漫性淋巴細胞浸潤,后者見膠原纖維壞死,未見毛囊及血管結(jié)構(gòu)。雷帕霉素組皮下組織及毛囊周圍淋巴細胞細胞浸潤明顯,部分
17、膠原纖維排列紊亂,表皮脫落,表明能抑制局部排斥反應(yīng)。在其余3組可見完整的表皮及真皮結(jié)構(gòu),其中在轉(zhuǎn)化的調(diào)節(jié)性T細胞處理組可見到較為密集的小血管和少量的淋巴細胞浸潤,以毛囊周圍較明顯,其表現(xiàn)與同系同基因移植組相似,而在天然調(diào)節(jié)性T細胞處理組仍可見到較多的淋巴細胞浸潤。
結(jié)論:⑴Renca條件培養(yǎng)基能誘導(dǎo)CD4+CD25-T細胞轉(zhuǎn)化為CD4+調(diào)節(jié)性T細胞,這種轉(zhuǎn)化作用是通過Renca細胞所產(chǎn)生的包括IL-10和TGF-β在內(nèi)的多
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