脂筏介導副粘病毒入胞途徑的初步探討.pdf_第1頁
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文檔簡介

1、目的:近年來的研究發(fā)現(xiàn),哺乳動物細胞質(zhì)膜中存在著一些脂質(zhì)組成特異、有序的局限性結構,這些膜異質(zhì)性區(qū)域被稱為“微區(qū)”(microdomain)或“脂筏” (lipid raft)。而小窩(caveolae)因為具有燒瓶底型凹陷的形態(tài)和特殊的標記蛋白小窩蛋白(caveolin)成為脂筏重要的一個亞類,與其它類型的脂筏相區(qū)別。研究表明,脂筏參與了許多細胞外信號跨膜傳遞的過程,為膜外分子與膜受體結合提供一個微環(huán)境。同時脂筏或小窩還介導了細菌、病

2、毒甚至細菌毒素、朊病毒等感染細胞,成為近年來微生物領域研究的重點。要研究脂筏的作用,其前期工作就是分離提取純化脂筏并對其進行鑒定。本課題組已在實驗室成功分離脂筏,并經(jīng)鑒定證實,為今后的研究工作奠定堅實的基礎。此外,本課題組選用副粘病毒科成員副流感病毒.3(HPIV-3)和新城雞瘟病毒(NDV)初步探討了脂筏與病毒感染的關系,以期為今后找到不同病毒通過脂筏入胞的共性,尋找新的抗病毒藥物靶點,深入了解細胞內(nèi)吞的機制打下基礎。 方法:

3、 1、脂筏的分離提純與鑒定: 所有操作步驟均在0-4℃下進行。對照組用15mM甲基-β-環(huán)糊精預處理,其它操作步驟與實驗組相同。兩組細胞數(shù)均約為2×10<'8>個,離心收集細胞沉淀,在細胞團中加入裂解緩沖液,混勻后用Dounce勻漿器輕打10次,再放入冰盒上裂解30min后離心,離心后的上清為去核液約1ml,向去核液中加入2ml 60﹪的OptiPrep,使其終濃度為40﹪,將以上稀釋物小心放入離心管底部,用細胞裂解緩沖

4、液稀釋OptiPrep,使其終濃度分別為30﹪、25﹪、5﹪。按從高到低的順序逐層加入到離心管中,每個梯度均為2ml。4℃下超速離心,100 000g,5h。從上到下依次收集離心樣品9份,每份約1ml,行免疫印跡分析。 2、脂筏介導HPIV-3和NDV入胞的初步探討(1)HPIV-3和NDV分別經(jīng)雞胚增殖后測定效價,HPIV-3為1:640,NDV為1:1280。并測定兩種病毒的TCID<,50>:HPIV-3的。rCID<,50>為1

5、0<'4.2>/0.1ml:NDV的TCID<,50>為10<'5.3>/0.1ml。 (2)以CPE為指標觀察藥物干預后病毒對細胞的感染性:分別以濃度5mmol/L、10mmol/、15mmol/L的甲基-β-環(huán)糊精37℃作用于MDCK細胞單層30min,之后以100TCID<,50>/0.1ml的HPIv-3或NDv 37℃吸附1.5h,于37℃,5﹪CO<,2>孵箱培養(yǎng)4天。每日觀察特征性細胞病變(CPE)。按統(tǒng)計學方法計

6、算各組藥物處理后病毒感染細胞的百分比。 (3)以蝕斑法測定藥物干預后病毒對細胞的感染性:配制含0.75﹪瓊脂的無酚紅RPMI1640 50℃保溫備用。分別用5mmol/L、10mmol/L、15mmol/L甲基-β-環(huán)糊精處理MDCK細胞單層30min,之后感染10<'5>的HPIV-3和10<'-7>NDV,37℃吸附1.5h,加第一層瓊脂,室溫固化后置37℃5﹪CO<'2>孵箱培養(yǎng)3天,第4天鋪第二層含中性紅的瓊脂培養(yǎng)基,避

7、光培養(yǎng)數(shù)小時或過夜,倒置顯微鏡下計數(shù)蝕斑數(shù),并進行統(tǒng)計學分析。 (4)小窩形態(tài)和NDV吸附細胞部位的電鏡觀察。 結果: 1、經(jīng)離心和免疫印跡實驗,脂筏主要位于25-30﹪密度梯度離心界面中,存在于收集樣品中的第5、6、7管。小窩蛋白-1的分子量約為24KD,而對照組第5、6、7管未發(fā)現(xiàn)小窩蛋白-1。 2、以CPE為指標觀察藥物干預后病毒對細胞的感染性:甲基-β-環(huán)糊精對兩種病毒感染細胞均有一定抑制作用,且

8、隨著劑量的增加效果明顯提高。 3、以病毒蝕斑為指標觀察藥物干預后病毒對細胞的感染性:經(jīng)統(tǒng)計學分析, 10mmol/L甲基-β-環(huán)糊精和15mmol/L甲基-β-環(huán)糊精處理后病毒感染細胞的抑制效果均有統(tǒng)計學意義(p<0.01)。盡管從數(shù)據(jù)上看NDV似乎更依賴脂筏進入細胞,但兩種病毒之間對通過脂筏感染細胞的區(qū)別沒有統(tǒng)計學意義。 4、透射電鏡下可見形態(tài)各異的凹陷狀小窩。NDV感染30分鐘,病毒吸附于細胞膜上一個小窩狀的凹陷內(nèi),

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