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文檔簡介
1、目的:
1、研究Indian hedgehog(Ihh)信號通路抑制劑—依普黃酮(ipriflavone,IP)是否可以阻止骨關節(jié)炎(osteoarthritis, OA)軟骨細胞的肥大分化及軟骨組織的降解,從而緩解OA;
2、研究IP對 OA軟骨細胞增殖、凋亡的影響,從而為治療OA提供實驗依據(jù);
3、運用微管吸吮技術,研究Ihh(力學敏感基因)通路抑制劑—IP是否可改善OA軟骨細胞的生物力學性能。
2、 方法:
1、選取因OA進行膝關節(jié)置換而截下的outbridge評分1-2分的脛骨平臺關節(jié)軟骨,消化成軟骨細胞進行細胞培養(yǎng)、切成4mm3大小進行軟骨組織塊培養(yǎng);
2、采用熒光免疫的方法鑒定軟骨細胞表型,以確定所培養(yǎng)的細胞為軟骨細胞;
3、軟骨細胞、軟骨組織塊實驗均分為DMSO空白組、IP低濃度組、IP高濃度組;
4、于IP干預2天培養(yǎng)后細胞進行RT-qPCR,檢測SMO、Gli-1、Gli-2、
3、Gli-3(Ihh信號通路指標)、Runx-2、MMP-13(軟骨細胞肥大指標)及COL II、Aggrecan(軟骨代謝指標);細胞進行Western Blotting,檢測COLII、MMP-13、COLX蛋白的變化;
5、于IP干預2天培養(yǎng)后采用CCK-8、EdU及流式方法檢測IP對OA軟骨細胞增殖、凋亡的影響情況;
6、于IP干預2天培養(yǎng)后,細胞進行微管吸吮,觀察IP對OA軟骨細胞生物力學性能的影響。
4、 7、IP干預OA軟骨組織塊2天后石蠟切片番紅O-固綠染色,高倍鏡下觀察蛋白多糖的變化,并進行組織學Mankin評分;進行免疫熒光染色,檢測COL II、Runx-2、COL X蛋白表達的變化;
結果:
1、軟骨細胞表型鑒定:細胞免疫熒光染色顯示,所培養(yǎng)的軟骨細胞 I型膠原(COL I)染色為陰性,II型膠原(COL II)的染色為陽性,可以確定從軟骨組織中分離的細胞為軟骨細胞;
2、IP通過抑制 Ihh
5、信號通路對 OA軟骨細胞的肥大分化及細胞代謝影響的RT-qPCR結果:IP藥物組Ihh信號通路指標SMO、Gli-1、Gli-2、Gli-3及軟骨細胞肥大分化指標 Runx-2、MMP-13的 mRNA較 DMSO空白組表達水平下降(P<0.05),軟骨細胞代謝指標 Aggrecan(蛋白多糖)、COL II的 mRNA水平較DMSO對照組顯著增高(P<0.05);
3、IP可以促進OA軟骨Col II蛋白表達,抑制MMP-1
6、3、COLX蛋白表達:IP干預OA軟骨細胞2天后,Western Blotting結果表明,IP藥物組OA軟骨細胞的Col II蛋白表達明顯多于DMSO對照組,MMP-13、COLX(軟骨細胞肥大分化的OA指標)表達較DMSO對照組更少,灰度值半定量結果有統(tǒng)計學意義(P<0.05);
4、IP對OA軟骨細胞增殖、凋亡的影響:首先用CCK-8檢測增殖情況,實驗結果發(fā)現(xiàn)細胞培養(yǎng)第3天、第4天時,IP藥物組的細胞增殖明顯高于DMSO
7、對照組(P<0.05);針對細胞第3天的增殖結果,采用EdU染色驗證了CCK-8檢測增殖的結果;流式方法測 IP對 OA軟骨細胞凋亡的影響結果發(fā)現(xiàn),細胞培養(yǎng)第3天,IP藥物組的軟骨細胞凋亡率相對DMSO對照組均顯著降低(P<0.05);
5、微管吸吮分析IP對OA軟骨細胞生物力學特性的影響:人OA軟骨細胞表現(xiàn)為典型的黏彈性固體蠕變特征,細胞瞬時模量(E0)、平衡模量(E∞)、表觀黏性(μ)較正常軟骨細胞均升高,但用IP藥物干預
8、后,OA軟骨細胞的E0、E∞、μ明顯降低,生物力學性能得到改善(P<0.05);
6、IP體外干預人OA軟骨組織塊2天后番紅O-固綠染色顯示IP對OA軟骨組織塊蛋白多糖的影響:IP藥物干預人OA軟骨組織塊后,IP藥物組軟骨組織塊相對DMSO對照組其軟骨細胞更多、蛋白多糖(PG)染色更深;組織學 Mankin評分DMSO對照組、IP低濃度組、IP高濃度組3組分別為8.34±0.58,4.67±0.57(P<0.01),2.34±
9、0.28(P<0.001),分數(shù)越低,OA軟骨退變越輕;
7、免疫熒光染色顯示IP對OA軟骨組織塊相關蛋白表達的影響:IP體外干預人OA軟骨組織塊2天后的免疫熒光染色顯示,IP藥物組軟骨組織塊的Col II明顯多于DMSO對照組,Runx-2、COL X表達較DMSO對照組更少??梢姡琁P可以促進OA軟骨組織塊Col II表達,抑制Runx-2、COL X表達,從而緩解軟骨組織塊的降解。
結論:
Ihh通路
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