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文檔簡介
1、缺血性腦卒中是嚴重威脅中老年人健康和生活質量的重要疾病,干細胞移植是促進腦損傷修復和改善神經(jīng)功能的具有實際應用前景的治療手段。作為較理想的供體細胞,骨髓間充質干細胞(bone maiTow stromal cells,BMSCs)移植在實驗性腦缺血的研究中已被證明有明確的保護作用,但缺血局部微環(huán)境如何促進BMSCs趨向病灶遷移的確切機制仍不明確。趨化因子是一類結構和功能相關的多肽超家族,基本功能是誘導表達有相應受體的細胞的定向遷移。有研
2、究提示趨化因子與其受體的作用可能參與促進移植的BMSCs在體內(nèi)的定向遷移?;|細胞衍生因子-1(stromal cell-deftved factor-1,SDF-1)和fractalkine是為數(shù)不多組成性表達于中樞神經(jīng)系統(tǒng)的趨化因子。當中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)生炎癥、缺血和缺氧等損傷后,病灶周圍SDF-1和fractalkine表達上調,分別作用于其特異性受體CXCR4或CX3CR1,可促進小膠質細胞向病灶的遷移和活化,募集循環(huán)系統(tǒng)中的單核細
3、胞、自然殺傷細胞和T淋巴細胞等,發(fā)揮清除壞死組織和促進損傷修復的作用。另有研究發(fā)現(xiàn)BMSCs也表達CXCR4和CX3CR1。由此提示SDF-1/CXCR4和fractalkine/CX3CR1可能參與誘導移植的BMSCs向損傷腦組織的定向遷移,但目前仍缺乏在體研究報道。本研究旨在觀察SDF-1與其受體CXCR4以及fractalkine與其受體CX3CR1的作用是否參與誘導移植的人骨髓間充質干細胞(bone marrow stromal
4、cells,hMSCs)向缺血腦組織的定向遷移,以進一步解釋移植BMSCs向腦損傷局部遷移的可能機制。 方法: 1.人骨髓間充質干細胞經(jīng)靜脈注射移植后向大鼠缺血性腦損傷區(qū)的遷移 以密度梯度離心貼壁篩選法分離純化hMSCs,流式細胞儀檢測細胞表面標記物進行細胞鑒定;采用線栓法制作大鼠大腦中動脈栓塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)2h缺血/再灌注模型,于再灌注后24h經(jīng)鼠
5、尾靜脈注射移植2×10.hMSCs;于移植后1d、3d和7d,取組織切片行小鼠抗人細胞核抗體mAb1281免疫組織化學染色,觀察hMSCs在大鼠體內(nèi)分布情況。 2.大鼠腦缺血后SDF-1和fractalkine表達的變化 線拴法制作大鼠大腦中動脈栓塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)2h缺血/再灌注模型,采用real time PCR和免疫組織化學技術,觀察腦缺血/再灌注后2d
6、、4d和8d腦組織SDF-1和fractalkine mRNA和蛋白表達的變化。 3.人骨髓間充質干細胞趨化因子受體CXCR4和CX3CR1的表達 分離、純化和擴增hMSCs,以real time PCR和western blotting檢測hMSCs趨化因子受體CXCR4和CX3CR1表達情況;并模擬損傷微環(huán)境部分方面(低氧)培養(yǎng)hMSCs,觀察趨化因子受體CXCR4和CX3CR1表達的變化。 4.干擾CXCR
7、4和CX3CR1基因表達對移植人骨髓間充質干細胞向缺血性腦損傷區(qū)遷移的影響 采用可表達CXCR4或CX3CR1基因特異性siRNA的慢病毒載體病毒顆粒,以MOI=20的載體病毒量感染hMSCs;流式細胞儀分析測定載體病毒對hMSCs的感染效率;real time PCR和western blotting檢測CXCR4和CX3CR1表達情況了解載體病毒感染后表達siRNA的干擾效率;將MCAO模型大鼠分為CX3CR1-RNAi-L
8、V感染hMSCs移植組、CXCR4-RNAi-LV感染hMSCs移植組、陰性病毒感染hMSCs移植對照組和載體溶液注射對照組,每組按照移植后1d、3d和7d不同的時間點分為3個亞組,各組大鼠于規(guī)定時間點行全身灌注固定,觀察hMSCs(GFP陽性細胞)在腦組織的分布情況。 結果: 1.人骨髓間充質干細胞經(jīng)靜脈注射移植后向大鼠缺血性腦損傷區(qū)的遷移 hMSCs呈長梭形、漩渦狀生長,用流式細胞儀檢測細胞表面標志物CD2
9、9和CD105陽性,CD14和CD45陰性;線拴法制作MCAO大鼠,術后Zea Longa五分制評分2~3分,TTC染色可見白色梗死區(qū);hMSCs靜脈移植后,在缺血/再灌注損傷側腦組織中可觀察到大量mAb1281陽性細胞,主要分布于缺血病灶周圍區(qū);在心、肝、脾、肺和腎等臟器以及損傷對側腦組織中僅可觀察到少量mAb1281陽性細胞散在分布。 2.大鼠腦缺血后SDF-1和fractalkine表達的變化 腦缺血/再灌注損傷2
10、d、4d和8d組大鼠缺血側大腦腦組織SDF-1 mRNA表達分別為正常對照組的2.285倍、2.543倍和1.710倍;fractalkine mRNA表達分別為正常對照組的1.154倍、2.453倍和1.341倍。免疫組織化學染色發(fā)現(xiàn)正常組大鼠腦組織中有SDF-1和fractalkine陽性表達,陽性細胞散在分布于皮質、紋狀體等部位;腦缺血/再灌注損傷組大鼠腦組織SDF-1和fractalkine陽性細胞明顯增多,損傷后2d、4d和8
11、d組大鼠腦組織梗死灶周圍區(qū)聚集大量SDF-1和fractalkine陽性細胞:SDF-1表達平均光密度由正常對照組的6.02±0.37,分別增高為37.8±1.30(2d組)、44.8±2.21(4d組)和30.6±1.08(8d組);fractalkine平均光密度由正常對照組的5.77±0.57,分別增高為31.3±1.80(2d組)、43.1±7.63(4d組)和30.2±4.18(8d組)。 3.人骨髓間充質干細胞趨化因
12、子受體CXCR4和CX3CR1的表達 CXCR4和CX3CR1免疫細胞化學染色陽性表達分布于hMSCs的細胞膜和細胞漿:hMSCs在常規(guī)培養(yǎng)條件下有CXCR4和CX3CR1 mRNA表達,低氧條件下CXCR4和CX3CR1表達增高,分別為常規(guī)培養(yǎng)條件下的2.162倍(P<0.01)和2.524倍(P<0.05);western blotting檢測發(fā)現(xiàn)hMSCs在正常培養(yǎng)條件下有CXCR4和CX3CR1表達,低氧條件下CXCR
13、4和CX3CR1表達顯著增高:CXCR4表達由正常組的0.535±0.061增高為0.901±0.029(P<0.01),CX3CR1表達由正常組的0.360±0.079增高為0.716±0.102(P<0.05)。 4.干擾CXCR4和CX3CR1基因表達對移植人骨髓間充質干細胞向缺血性腦損傷區(qū)遷移的影響 流式細胞分析慢病毒載體對hMSCs感染效率均高于90%。陰性病毒感染組hMSCsCXCR4和CX3CR1 mRNA
14、表達與正常未感染組hMSCs比較無顯著差異(P>0.05);CXCR4-RNAi-LV感染組hMSCs CXCR4 mRNA表達與正常未感染組hMSCs比較下降82.6%(P<0.01);CX3CR1-RNAi-LV感染組hMSCs CX3CR1 mRNA表達與正常未感染組hMSCs比較下降了74.4%(P<0.01)。western blotting檢測發(fā)現(xiàn)陰性病毒感染組和正常未感染組CXCR4和CX3CR1表達無顯著差異;CXCR4
15、-RNAi-LV感染組較正常未感染組CXCR4表達下降80.0%(P<0.05),CX3CR1-RNAi-LV感染組較正常未感染組CX3CR1表達下降71.7%(P<0.05)。各組大鼠腦組織中均可觀察到GFP陽性細胞,主要分布于缺血側大腦半球病灶周圍區(qū);CXCR4一RNAi-LV感染hMSCs移植組和CX3CR1-RNAi-LV感染hMSCs移植組與陰性病毒感染hMSCs移植對照組相比,移植后1d、3d和7d,腦組織中GFP陽性細胞數(shù)
16、量均顯著減少(P<0.01)。 結論: 1.靜脈注射移植的骨髓間充質干細胞向缺血性腦損傷區(qū)定向遷移; 2.缺血性腦損傷區(qū)趨化因子SDF-1和fractalkine表達增高; 3.骨髓間充質干細胞表達趨化因子SDF-1受體CXCR4和fractalkine受體CX3CR1; 4.干擾SDF-1受體CXCR4或fractalkine受體CX3CR1的基因表達后,移植的骨髓間充質干細胞向缺血性腦損傷區(qū)的
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