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文檔簡介
1、背景:
心肌梗死(Myocardial Infarcion,MI)是引起缺血性心肌病(Ischemic Cardiomyopathy,ICM)產(chǎn)生心力衰竭(Heart Failure,HF)的主要病因之一,嚴重影響人類的健康水平和生活質(zhì)量。近年來研究發(fā)現(xiàn),心肌梗死后部分心肌細胞仍可以進行分裂增殖,但是每年的更新率僅為1%,不能彌補梗死區(qū)域損失的心肌細胞數(shù)量[1]。目前,臨床上MI的治療方法均無法挽救已經(jīng)壞死的心肌細胞。隨著對干
2、細胞研究的進一步深入,發(fā)現(xiàn)將干細胞誘導(dǎo)分化為心肌細胞后移植到心梗區(qū)域能夠促進心肌細胞再生從而改善心功能,這一研究發(fā)現(xiàn)為MI的治療帶來了新的希望。骨髓間充質(zhì)干細胞(Bone Marrow Mesenchymal Stem cells,BMMSCs)因具有多向分化潛能、高效的自我更新能力以及取材容易等特性已經(jīng)成為干細胞的研究熱點,然而,BMMSCs在體外長期培養(yǎng)時出現(xiàn)的衰老問題限制了其在臨床治療中的應(yīng)用。近期研究發(fā)現(xiàn),PIM-1是Akt信號
3、通路中重要的下游調(diào)節(jié)因子,廣泛的參與細胞增殖、細胞分化、凋亡等生理過程,具有提高細胞增殖能力的生物學作用。但PIM-1對BMMSCs增殖能力的調(diào)控作用和對細胞增殖周期的影響尚不清楚。
目的:
(1)研究大鼠BMMSCs體外分離培養(yǎng)的方法以及各代BMMSCs的增殖規(guī)律。
(2)探討PIM-1對大鼠BMMSCs增殖能力和凋亡的影響。
(3)探索PIM-1對大鼠BMMSCs衰老的調(diào)控作用。
方
4、法:
(1)大鼠BMMSCs的分離培養(yǎng)與鑒定:采用密度梯度離心法聯(lián)合差速貼壁法分離培養(yǎng)大鼠BMMSCs,傳代以純化細胞,用流式細胞儀鑒定第4代(P4) BMMSCs表面抗原。應(yīng)用倒置光學顯微鏡觀察各代BMMSCs的形態(tài)學特征。
(2)BMMSCs的轉(zhuǎn)染:將 P4 BMMSCs接種于24孔板中,分為空白對照組(BMMSCs組),egfp轉(zhuǎn)染組(BMMSCe組)和PIM-1-egfp轉(zhuǎn)染組(BMMSCep組),每組細胞設(shè)
5、3個復(fù)孔,分別將 Lv-egfp轉(zhuǎn)入 BMMSCe組,將 Lv-egfp-PIM-1轉(zhuǎn)入BMMSCep組。
(3)PIM-1基因和TERT基因的表達檢測:采用實時熒光定量PCR法分別檢測P4 BMMSCep組和P9 BMMSCep組中PIM-1基因表達水平和P9 BMMSCep組中TERT基因的表達水平,應(yīng)用2(-△△ct)法分析。應(yīng)用 Western Blotting法檢測轉(zhuǎn)染后PIM-1蛋白的表達水平并進行半定量分析。
6、r> (4)細胞增殖能力和細胞周期的檢測:采用MTT法檢測各代BMMSCs的細胞增殖能力和經(jīng) PIM-1轉(zhuǎn)染后細胞增殖能力的變化并繪制細胞增殖曲線。采用流式細胞儀技術(shù)檢測各代BMMSCs的細胞周期及經(jīng)PIM-1轉(zhuǎn)染后細胞周期的變化。
結(jié)果:
(1)BMMMSCs的形態(tài)學變化及鑒定:原代細胞體積小,形態(tài)多變,呈梭形或星形,可見細胞突起從胞質(zhì)內(nèi)伸出。P3~ P9 BMMSCs細胞形態(tài)發(fā)生明顯改變,P3 BMMSCs細胞
7、排列緊密,呈長梭形,形態(tài)均一;P9 BMMSCs細胞胞體明顯增寬,長梭形形態(tài)消失,細胞內(nèi)出現(xiàn)空泡。流式細胞儀鑒定BMMSCs表面抗原的結(jié)果顯示,CD29表達率為(96.2±2.1)%,CD44表達率為(94.2±3.2)%,CD45表達率為(2.1±1.3)%。
(2)BMMSCs細胞增殖規(guī)律及細胞周期的檢測: P3~ P9 BMMSCs組的細胞生長曲線均呈S形。在第1d~2d處于潛伏期,細胞生長緩慢;在第3d~5d時,細胞進
8、入對數(shù)生長期,增殖加速;至第6 d時,細胞增殖速度減慢,P3、P5、P7、P9 BMMSCs細胞光吸收值分別為:0.591±0.132、0.560±0.179、0.527±0.164、0.458±0.121,說明P3~P5細胞增殖良好,P9細胞增殖不良(P<0.05)。細胞周期檢測結(jié)果顯示,隨著傳代次數(shù)的增加處于增殖期的細胞比例下降,P9中處于增殖期的細胞比例最低(P<0.05)。說明BMMSCs在體外培養(yǎng)時,隨著傳代次數(shù)的增多,細胞增
9、殖能力逐漸降低,當傳至第9代時,BMMSCs進入衰老狀態(tài)。
(3)PIM-1對大鼠BMMSCs增殖能力和凋亡的影響:應(yīng)用慢病毒介導(dǎo)的PIM-1轉(zhuǎn)染P4 BMMSCs后,BMMSCs組、BMMSCep組和BMMSCe組中PIM-1基因的表達量分別為(0.71±0.065)bp、(1.40±0.198)bp和(0.72±0.105)bp,BMMSCep組中PIM-1基因的表達量顯著高于BMMSCs組和BMMSCe組(P<0.05)
10、。Western blot及半定量分析結(jié)果顯示,BMMSCep組中 PIM-1蛋白的表達水平顯著高于BMMSCs組和BMMSCe組(P<0.05)。在6 d時,BMMSCs組、BMMSCe組和BMMSCep組吸光度值分別為0.52±0.029、0.54±0.041、0.72±0.031,BMMSCep組的細胞增殖能力顯著高于BMMSCs組和BMMSCe組(P<0.05),說明PIM-1能夠顯著提高 BMMSCs的增殖能力。流式細胞儀檢測
11、細胞凋亡結(jié)果顯示,BMMSCs組、BMMSCe組及BMMSCep組的凋亡數(shù)目百分率為(12.9±1.51)%、(13.8±2.57)%、(5.03±0.74)%,BMMSCep組細胞凋亡數(shù)目顯著降低(P<0.05),說明PIM-1能夠抑制BMMSCs凋亡。
(4)PIM-1對BMMSCs衰老的影響:應(yīng)用慢病毒介導(dǎo)的PIM-1轉(zhuǎn)染P9 BMMSCs后,P9 BMMSCs組、P9 BMMSCep組和P9 BMMSCe組TERT基因
12、的表達量分別為(1.02±0.082)bp、(2.273±0.153)bp和(1.08±0.183)bp,BMMSCep組中TERT基因的表達量顯著高于BMMSCs組和BMMSCe組(P<0.05),說明在P9 BMMSCs中過表達PIM-1能夠顯著提高TERT基因的表達水平。在第6 d時,P5 BMMSCs組、P7 BMMSCs組、P9 BMMSCs組、P9 BMMSCe組和P9 BMMSCep組的吸光度值分別為0.560±0.179
13、、0.527±0.164、0.450±0.120、0.460±0.198和0.534±0.137,P9 BMMSCep組的細胞增殖能力顯著高于P9 BMMSCs組和P9 BMMSCe組(P<0.05),而P9 BMMSCep組與P7 BMMSCs組的細胞增殖能力無統(tǒng)計學差異(P>0.05)。細胞周期檢測結(jié)果顯示PIM-1能夠促進P9 BMMSCs由G0/G1期進入S期,顯著提高了細胞的增殖能力,并延緩了P9 BMMSCs衰老進程。
14、> 結(jié)論:
(1)采用密度梯度離心聯(lián)合差速貼壁的方法可以獲得高純度的BMMSCs,隨著體外傳代次數(shù)的增多,細胞增殖能力逐漸降低,傳至第9代后BMMSCs逐漸進入衰老狀態(tài)。
(2)應(yīng)用慢病毒介導(dǎo)的PIM-1轉(zhuǎn)染P4 BMMSCs后,P4 BMMSCs增殖能力提高,凋亡數(shù)目減少。
(3)應(yīng)用慢病毒介導(dǎo)的PIM-1轉(zhuǎn)染P9 BMMSCs后,能夠促使P9 BMMSCs由G0/G1期進入S期,提高P9 BMMSCe
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