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文檔簡介
1、目的:建立體外培養(yǎng)星形膠質(zhì)細胞液壓沖擊損傷模型,觀察星形膠質(zhì)細胞液壓沖擊前后形態(tài)學改變和研究蛋白質(zhì)組表達變化情況,尋找差異性蛋白標志物。 方法:選新生24小時內(nèi)SD大鼠,取皮質(zhì)組織,經(jīng)第一次純化傳代后培養(yǎng)8-10天,隨機分為對照組及損傷后12h、24h和48h組,復制Scott′s細胞液壓沖擊損傷模型,進行細胞形態(tài)學觀察。采用雙向凝膠電泳技術(shù)分析星形膠質(zhì)細胞液壓沖擊損傷后不同時間點蛋白質(zhì)組表達的改變。 結(jié)果: 1
2、 星形膠質(zhì)細胞培養(yǎng)和純化:我們采用SD大鼠皮質(zhì)原代培養(yǎng)膠質(zhì)細胞進行研究,以模擬腦外傷時膠質(zhì)細胞蛋白質(zhì)組學的變化。新生的SD大鼠,分離皮質(zhì),剝除腦膜,置于鹽平衡液,剪碎,彎管輕輕吹打分散細胞,過網(wǎng)篩,差速粘附去除成纖維細胞?;旌吓囵B(yǎng)至第9-12天待細胞融合后,置于37℃搖床中,200r/min 14-16h,以去除少突膠質(zhì)細胞和小膠質(zhì)細胞。然后用0.25%胰蛋白酶消化傳代,接種于直徑為60mm培養(yǎng)皿中,接種密度為0.8×10<'5>/ml
3、,得到純化的星形膠質(zhì)細胞。采用GFAP抗體免疫組化(SP法)染色鑒定,通過計數(shù),檢查培養(yǎng)純度。結(jié)果顯示培養(yǎng)的膠質(zhì)細胞純度達到95%以上。繼續(xù)培養(yǎng)7-8天,生長狀態(tài)良好,鋪滿瓶底,形成大致均一的扁平細胞層。此時的星形膠質(zhì)細胞狀態(tài)穩(wěn)定,可以進行沖壓損傷實驗。 2 體外培養(yǎng)細胞液壓沖擊損傷裝置穩(wěn)定性評價:液壓沖擊損傷模型所產(chǎn)生壓力的大小,通過記錄小室內(nèi)和有機玻璃管內(nèi)的壓力大小來反映。實驗證明,小室內(nèi)和有機管內(nèi)的壓力差別很大,兩者間存
4、在一線性關(guān)系:Y=4.4763X+0.2986,Y為有機玻璃管內(nèi)壓力,X為小室內(nèi)壓力。通過連接兩個壓力傳感器,分別測量在不同沖擊角度下兩處壓力的大小,造成細胞損傷力的大小以小室內(nèi)的壓力為準。有機管和小室內(nèi)壓力隨鐘擺打擊角度的增加而增大。 3 液壓沖擊損傷星形膠質(zhì)細胞形態(tài)學改變:隨機將細胞分為對照、0.05MPa、O.1MPa、0.2MPa、0.4MPa、0.8MPa沖擊壓力組,損傷后換全液,半小時后在培養(yǎng)液中加入0.4%臺盼藍1
5、ml,混勻,光鏡下觀察。星形膠質(zhì)細胞隨著沖擊壓力的不斷升高,依次發(fā)生了腫脹、細胞連接斷開、皺縮、脫壁、小片狀脫壁、消融等顯著損傷壞死后形態(tài)學改變。沖壓損傷后PI/Hoechst33342(1:1)熒光雙染后,發(fā)現(xiàn)星形膠質(zhì)細胞隨著沖擊壓力的不斷升高死亡細胞比率有增高趨勢,而且在0.2MPa沖擊壓力組觀察到細胞凋亡。但是當壓力達到0.8MPa沖擊壓力后,死亡細胞數(shù)顯著下降,考慮是壞死損傷細胞已經(jīng)發(fā)生快速消融。 結(jié)合前部分實驗,得出
6、0.2MPa可以造成星形膠質(zhì)細胞中度損傷。隨機將細胞分為對照組,2h、4h、8h、12h、24h、48h組,分別給予0.2MPa沖擊壓力后,換全液,分別在2h、4h、8h、12h、24h、48h,加入1ml 0.4%臺盼藍,混勻,光鏡下觀察。在0.2MPa中重度沖擊壓力損傷后,星形膠質(zhì)細胞隨時間發(fā)生變圓、細胞連接斷開、皺縮、脫壁、胞膜破裂、恢復等顯著的形態(tài)學改變。光鏡下觀察,損傷最嚴重發(fā)生在2、4小時,到8、12小時細胞狀態(tài)趨于穩(wěn)定,開
7、始恢復了,到24、48小時已與對照組基本相同。 4 大鼠皮質(zhì)原代星形膠質(zhì)細胞液壓沖擊損傷前后差異蛋白質(zhì)譜分析:各組檢測到的總蛋白點數(shù),對照組1179±89,12h組1279±113,24h組1233±73,48h組1256±132。損傷后共有32個蛋白質(zhì)點的相對強度與手術(shù)對照組相比有顯著性差異(P<0.05),其中24個蛋白點與對照組相比在損傷組表達升高,有8個蛋白質(zhì)點與對照組相比在損傷組表達下降。 結(jié)論: 1 體外培
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